Fichas de asignaturas 2010-11
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BIOLOGÍA MOLECULAR Y BIOTECNOLOGÍA |
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Asignatura |
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Evaluación |
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Recursos Bibliográficos |
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Código | Nombre | |||
Asignatura | 2304033 | BIOLOGÍA MOLECULAR Y BIOTECNOLOGÍA | Créditos Teóricos | 4,5 |
Descriptor | MOLECULAR BIOLOGY AND BIOTECHNOLOGY | Créditos Prácticos | 1,5 | |
Titulación | 2304 | LICENCIATURA EN CIENCIAS DEL MAR Y EN CIENCIAS AMBIENTALES | Tipo | Optativa |
Departamento | C125 | BIOQUIM. Y BIOL. MOLEC., MICROB., MED. PREV. Y SALUD PUBL., FISIOL. Y GEN. | ||
Curso | ||||
Duración (A: Anual, 1Q/2Q) | 1Q | |||
Créditos ECTS | 4,8 |
Para el curso | Créditos superados frente a presentados | Créditos superados frente a matriculados |
2007-08 | 71.4% | 41.7% |
Pulse aquí si desea visionar el fichero referente al cronograma sobre el número de horas de los estudiantes.
Profesorado
Manuel Jesus Martínez Valdivia Antonio Astola Gonzalez
Situación
Prerrequisitos
Los alumnos que cursen la asignatura deben tener conocimientos suficientemente amplios de Biología y Química general adquiridos en asignaturas previamente cursadas en cursos iniciales de titulaciones universitarias.
Contexto dentro de la titulación
La asignatura se integra y coordina con diversas materias con contenidos biológicos y abarca los fundamentos, técnicas y aplicaciones de la Biología Molecular y de la Biotecnología con especial interés a las especies del mundo marino y su medio ambiente.
Recomendaciones
Los alumnos deben tener como complemento indispensable, conocimientos generales de ciencias como la Bioquímica, Microbiología y la Genética. Así mismo es imprescindible el conocimiento básico del idioma inglés a nivel de lectura para la adquisición y asimilación de la información bibliográfica más actualizada de la Biología Molecular y sus aplicaciones en la Biotecnología
Competencias
Competencias transversales/genéricas
Capacidad de análisis, asimilación y discusión de trabajos científicos y materias teóricas generales del área de la Biología en general y la Bioquímica y Biología Molecular en particular. Para ello se requiere un conocimiento básico del inglés científico, y la posibilidad del uso de la consulta bioinformática a través de las web especializadas en la materia.
Competencias específicas
Cognitivas(Saber):
Conocer las fuentes principales de información científica más usualmente empleadas para la acumulación y exposición informática de la bibliografía y experimentación en Biología Molecular. Saber analizar las estructuras, sistemas, tecnologías y posibles aplicaciones prácticas en numerosos campos de los conceptos básicos de estudio en la Biología Molecular.
Procedimentales/Instrumentales(Saber hacer):
Destreza en el aprendizaje de nuevas técnicas para el alumno en el laboratorio de Biología Molecular. Utilización efectiva y capacidad de selección de la bioinformación a partir de las múltiples páginas web disponibles.
Actitudinales:
Habilidad intelectual y capacidad de organización para desenvolverse en un laboratorio básico de Biología Molecular. Capacidad de síntesis y planificación del trabajo diario sobre el programa y tareas de la asignatura.
Objetivos
Proporcionar al alumno los conocimientos teóricos y prácticos básicos que le permitan: - Asimilar y desarrollar conceptos fundamentales sobre la Biología Molecular de las proteínas y los ácidos nucleicos. - Establecer las bases moleculares sobre la estructura de los genomas y los genes y analizar los mecanismos celulares de la expresión y regulación génica. - Conocer las principales técnicas experimentales en el análisis de proteínas y ácidos nucléicos en el ámbito de la Biología Molecular. - Exponer las principales aplicaciones moleculares de las tecnologías del ADN recombinante en el campo biotecnológico con especial incidencia en el mundo marino.
Programa
Unidad Temática I : Estructura y Dinámica de los Acidos Nucléicos Bases, nucleósidos y nucleótidos, enlaces químicos en el DNA y RNA. Adsorción en el UV : efecto hipercrómico. Bases modificadas en el DNA . Metilación del DNA. Estructura de Watson y Crick: tipos de enlaces. Interacciones covalentes en el DNA. Formas del DNA : B,A,Z,H. Tamaño del DNA. Tipos de secuencias : simples, repetidas, satélites, SINES. LINES, Alu, Organización del genoma. Modelo de estructura del cromosoma eucariota. Estructura de la cromatina : el nucleosoma. Proteínas histonas : modificaciones postranslacionales. Estructura del RNA : bases modificadas. Hidrólisis alcalina del RNA. Procesos de desnaturalización y renaturalización del DNA. Cot. Nucleasas. Unidad Temática II : Replicación de los Genomas Experimentos clásicos : Hersley-Chase; Avery-McLeod; Cairns; Mendelson-Stahl. Química de la replicación. Replicación semiconservativa y bidireccional. DNA polimerasas en E.coli. Enzima de Kornberg: actividades. Fragmento klenow. Origen de replicación : oriC. Iniciación en E.coli: helicasas,girasa, proteínas ssB. Replisoma : Polimerasa III, primasa, fragmentos de Okazaki. Polimerasa I. DNA ligasa. Múltiples orígenes en eucariotas. Replicación en los telómeros: telomerasa. Fidelidad de la replicación. Replicación de la cromatina. Replicación del DNA mitocondrial. Replicación de virus RNA: replicasas. Replicación de retrovirus: transcriptasa inversa, integrasa. Inhibición de la replicación. Unidad Temática III : Mutación, Reparación y Modificación del Genoma Tipos de de mutaciones y principales mutágenos. Modificaciones químicas en el DNA: desaminación, depurinización. Mecanismos de reparación directa: fotoreactivavción, metil guanina metiltransferasa. Reparación por ruptura de bases. Reparación por ruptura de nucleótidos. Sistema de reparación Mut bacteriano. Reparación por recombinación. Defectos en la reparación del DNA : enfermedades. Recombinación homóloga. Modelos: copia, ruptura y reunión. Sistema de recombinación Rec bacteriano. Recombinación no homóloga específica de lugar. Integración de lambda en E.coli. Reordenamientos genómicos : movimiento, duplicación y amplificación del DNA. Recombinación no específica de lugar. Transposones. Retrotransposones I y II. Retrogenes. Unidad Temática IV : Transcripción en Procariotas y Regulación Génica. Química y enzimología de la transcripción. RNA polimerasas. Iniciación : secuencias cis y burbuja de iniciación, factor sigma. Elongación: modelos de avance.Terminación : secuencias GC y factor Rho. Inhibición de la transcripción. Regulación : concepto de operón. Operón lac : operador y genes estructurales. Represor, inductor, co-represor, represión catabólica, CAP-cAMP. Operón de la arabinosa. Operón del triptófano : atenuación. Procesamiento y maduración del rRNA y tRNA procariota. RNAsas. Ribozimas. Unidad Temática V : Transcripción en Eucariotas. RNA polimerasas. Diferencias generales con procariotas. Factores de iniciación, elongación y terminación. Promotor de la polimerasa II: secuencias cis. Factores TFII, TBP y TAFs. CAP y poliadenilación del RNA mensajero : guanililtransferasa y poli-A-polimerasa. Procesamiento del RNA mensajero: spliceosoma. Splicing alternativo. Unidades transcripcionales. Promotor de la polimerasa I. Factores TFI, SL1 y UBF. Transcripción por la polimerasa III, factores TFIII. Transcripción mitocondrial. Procesamiento del RNA ribosómico y transferente. Unidad Temática VI : Biosíntesis de Proteínas El código genético. Modificaciones al código general. Aminoacil tRNA sintetasas. Iniciación en procariotas. Secuencia Shine-Dalgano. Formil metionil tRNA. Factores de iniciación Ifs. Fase de elongación. Peptidil transferasa. Factores EF y translocación. Terminación. Balance energético de la biosíntesis de proteínas. Corrección de errores durante el proceso de síntesis. Inhibición de la síntesis de proteínas. Fases finales de la síntesis: plegado de la cadena y modificación covalente. Modelo de secreción de proteínas en procariotas. Diferencias en la biosíntesis en eucariotas : factores eIFs e iniciación, factores eEFs y RFs. Unidad Temática VII : Control, Regulación y Expresión Génica en Eucariotas Secuencias cis y factores trans. Secuencias reguladoras o enhancers. Activadores y represores de la transcripción. Motivos estructurales de los factores de transcripción: homeodomain, dedos de zinc, cremalleras de leucina, hélice-lazo-hélice. Modificaciones postranslacionales de las proteínas : fosforilaciones, glicosilaciones, formación de puentes disulfuro, ribosilaciones, farnesilaciones. Reconocimiento del péptido de señal, partícula SRP. Vida media de las proteínas. Ubiquitinización. Unidad Temática VIII : Tecnología del ADN Recombinante Purificación, Cuantificación, y Análisis electroforético de RNA y DNA. Síntesis de oligonucleótidos. Mapa de restricción de DNA. Plásmidos y fagos. Resistencia a antibióticos. Células huésped: E.coli. Enzimas de modificación : restricción, transferasa terminal, nucleasa S1. Adaptadores. Clonaje. DNA ligasa. Transferasa terminal. Fragmento klenow. Polinucleótido kinasa y fosfatasa alcalina. Transformación: electroporación. Vectores : pUC, pBS, lambda, cósmidos, YACs, BAC, PAC.. Genotecas : expresión y genómicas. Muestreos en el clonaje de secuencias de DNA y cDNAs. Marcaje radiactivo : alfa dNTP, gamma dNTP. Marcaje no radiactivo : biotina dUTP, avidina. Secuenciación. Hibridación Southern y Northern. Hibridación in situ. FISH. Amplificación de ácidos nucleicos: PCR, RT-PCR. Mutagénesis dirigida. Expresión de proteínas : vectores de expresión, sistemas en E.coli y baculovirus. Proteínas de fusión. Ingeniería de proteínas :modificaciones. Transfección de DNA. EMSA. Fingerprinting. RNAi. RNA anti-sentido. Técnica del knock-out. Proyectos Genoma : genómica y proteómica. Unidad Temática IX : Aplicaciones biotecnológicas de la Biología Molecular Producción de proteínas recombinantes : insulina, hormona del crecimiento, anticuerpos. Diagnóstico genético de enfermedades. Identificación Molecular de agentes infecciosos y contaminantes. Diagnóstico de paternidad. Terapia génica: taxis genéticos, cromosomas artificiales. Taxonomía molecular. Organismos transgénicos. Clonación de células. Clonación de organismos Biotecnología de plantas: empleo del plásmido Ti y sus aplicaciones biotecnológicas. Bioética. Patentes en biotecnología. Prácticas. a) Laboratorio de experimentación . Realización de las siguientes prácticas : - Aislamiento de DNA plasmídico. - Purificación de DNA genómico. - Digestión con enzimas de restricción y nucleasas. - Amplificación de un fragmento de DNA por PCR. - Análisis electroforético de DNA en geles de agarosa. b) Bioinformática. Consulta de las bases de datos del ncbi y EMBO. Búsqueda bibliográfica: autores, temas específicos, laboratorios etc. Comparación de secuencias de proteínas, y ADN. Homología de secuencias. Taxonomía Molecular. Proyectos genoma. Consulta de revistas y libros on line.
Actividades
Realización de programa de prácticas en el laboratorio y ejercicios prácticos de aprendizaje del uso de las bases de bioinformática con aplicación en la experimentación en Biología Molecular
Metodología
Sesiones practicas desarrolladas en el laboratorio. Sesión en el aula de informática. Clases teóricas sobre el programa de la asignatura
Distribución de horas de trabajo del alumno/a
Nº de Horas (indicar total): 160
- Clases Teóricas: 31,5
- Clases Prácticas: 10,5
- Exposiciones y Seminarios:
- Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales):
- Colectivas: 3
- Individules:
- Realización de Actividades Académicas Dirigidas:
- Con presencia del profesorado: 3
- Sin presencia del profesorado: 12
- Otro Trabajo Personal Autónomo:
- Horas de estudio: 55 (47+8)
- Preparación de Trabajo Personal: 29
- ...
preparación de examen: 14
- Realización de Exámenes:
- Examen escrito: 2
- Exámenes orales (control del Trabajo Personal):
Técnicas Docentes
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Criterios y Sistemas de Evaluación
Asistencia y participación en las clases teóricas presenciales y clases prácticas Realización de un examen sobre los contenidos de las clases presenciales Realización de una memoria sobre las prácticas Valoración en su caso de un trabajo autorizado y académicamente dirigido. Criterios de evaluación y calificación (referidos a las competencias trabajadas durante el curso): La asistencia a las clases presenciales contribuirán a la calificación global con un 5%. El examen sobre los contenidos de las clases presenciales supondrá un 70%. La memoria de prácticas y los trabajos sobre actividades dirigidas y autorizadas alcanzará el 25% de la nota final.de la nota final. El empleo del aula virtual servirá como herramienta útil para la evaluación global del trabajo y conocimientos adquiridos por el alumno.
Recursos Bibliográficos
4.1 GENERAL Molecular Biology of the Gene Watson etal. 2004 CSHL Press Biología Molecular de la Célula. Alberts et al. 2004 Genes VII. Lewin 2000 The Cell . A Molecular Approach. Cooper 2000 Molecular Biotechnology Glick et al. 1994 ASM Press Recombinant DNA . Watson 1992 Bioquímica. Stryer y col. 2003 Biochemistry. Berg et al. 2002 Bioquímica. Voet y col. 1998 Bioquímica. Mathews y col. 2003 Addison Wesley
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