Profesorado

Prof. Manuel Antonio Rodríguez Iglesias (TU)
Prof. Santiago Pérez Ramos (TU)
Prof. Fátima Galán Sánchez (Ayudante Doctor)

Situación

Contexto dentro de la titulación

Asignatura complementaria a Microbiología y Parasitología en la que se
recogen
aspectos singulares de nuevos patógenos o bien otros que han
modificado su
comportamiento patogénico o epidemiológico.

Recomendaciones

Tener superada la asignatura de Microbiología y Parasitología.

Competencias

Competencias transversales/genéricas

- Lectura de bibliografía en inglés
- Hacer revisiones críticas de literatura científica.
- Realizar presentaciones audiovisuales.
- Realizar exposiciones en publico.
- Escuchar presentaciones de otros compañeros y someterlos a la
crítica
constructiva.

Competencias específicas

• Cognitivas(Saber):

  Tener conocimiento de los agentes infecciosos que han modificado su
  comportamiento en los últimos años y los fatores que han contribuido
  a esta situación.

• Procedimentales/Instrumentales(Saber hacer):

  Leer la bibliografía recomendada y aprender a extraer la información
  útil, así como exponerla en público, expuesto a la crítica y a la
  revisión.

• Actitudinales:

  Comprender la importancia de estos agentes y el desarrollo de nuevas
  enfermedades, ejercitando el espíritu crítico y el rigor científico.

Objetivos

Conocer aquellos agentes infecciosos cuya incidencia ha aumentado en los
últimos años en nuestro medio y constituyen un problema de salud pública.
Estudiar los factores que contribuyen a la aparición de nuevas
enfermedades
infecciosas.

Programa

PROGRAMA TEÓRICO
1.  Concepto de patología emergente.
2.  El paciente inmunodeprimido y la patología emergente.
3.  Avances en factores de virulencia.
4.  Bacterias resistentes a loa antibióticos. Mecanismos de acción.
5.  Problemas actuales de la infección hospitalaria.
6.  Streptococcus pneumoniae.
7.  Meningitis meningocócica. Epidemiología y prevención.
8.  Bacterias emergentes asociadas al consumo de alimentos
9.  Bacterias de uso potencial como arma biológica: Bacillus
anthracis,
Yersinia pestis, Clostridium botulinum y Francisella tularensis.
10.  Helicobacter pylori y cáncer.
11.  Nuevos aspectos en tuberculosis. Reemergencia, resistencia y
terapia.
12.  Rickettsiosis emergentes.
13.  Chlamydophila pneumoniae
14.  Viruela. Monkeypox.
15.  Mecanismos de oncogénesis vírica
16.  Avances en hepatitis vírica
17.  Nuevos conceptos en la epidemiología de la hepatitis E
18.  Dengue y fiebre amarilla
19.  Gripe humana y aviar
20.  Virus de la inmunodeficiencia humana y otros retrovirus
21.  Síndrome respiratorio agudo severo
22.  Fiebres hemorrágicas víricas
23.  Virus West-Nile y otros arbovirus.
24.  Virus productores de gastroenteritis
25.  Avances en el conocimiento de los priones. Diagnóstico y
prevención.
26.  Micosis emergentes
27.  Protozoos emergentes
28.  Malaria. Epidemiología y prevención
29.  Helmintos emergentes.
30.  Las nuevas vacunas.


PROGRAMA PRÁCTICO

Se realizarán ejercicios prácticos y supuestos clínicos evaluables.y
seminarios de lectura crítica de artículos científicos, que serán
impartidos
por los propios alumnos y que serán evaluados en la nota final.

Actividades

- Lectura crítica individualizada de artículos científicos seleccionados y
expuestos públicamente.

Metodología

Exposición del temario teórico y actividades programadas

Distribución de horas de trabajo del alumno/a

Nº de Horas (indicar total): 45

• Clases Teóricas: 20  
• Clases Prácticas:  
• Exposiciones y Seminarios: 25  
• Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales):
  • Colectivas:  
  • Individules:  
• Realización de Actividades Académicas Dirigidas:
  • Con presencia del profesorado:  
  • Sin presencia del profesorado:  
• Otro Trabajo Personal Autónomo:
  • Horas de estudio:  
  • Preparación de Trabajo Personal:  
  • ...
     
• Realización de Exámenes:
  • Examen escrito:  
  • Exámenes orales (control del Trabajo Personal):  

Técnicas Docentes

Criterios y Sistemas de Evaluación

Asistencia y realización del trabajo y exposición del material
bibliográfico
seleccionado

Recursos Bibliográficos

Emerging Infectious Diseases (año 2009)

Profesorado

PROFESORADO RESPONSABLE:
Profª Dra. ANA MARIA NAVARRO AREVALO. Catedrática de Bioquímica y
Biología Molecular.
PROFESORADO DISPONIBLE:
Prof. Dra Carmen Gómez Gómez, Prof. Contratado Doctor
Prof. Dra Carmen Piñuela Rojas, Prof Contratado Doctor

Objetivos

El modelo médico de enfermedades sostiene que las manifestaciones son el
resultado de un proceso, el cual tiene una causa. La causa de una
enfermedad
puede ser bien un factor extrínseco, o bien un factor intrínseco, siendo
en la
mayoría de los casos una combinación de ambos, es decir, una causa
multifactorial.
La práctica de la medicina combina la ciencia y el arte. La solución de
muchos
problemas clínicos se fundamenta en la tecnología basada en la ciencia.
a.- Transmisión de conocimientos sobre: las bases moleculares de la
enfermedad. Establecimiento de relaciones con otras ciencias de la vida.
b.- Desarrollar conocimiento sobre el uso de técnicas de biología
molecular
aplicadas al diagnóstico en medicina.

Programa

PROGRAMA TEÓRICO.

Lección 1. Introducción. Perspectiva histórica. De la biología molecular a
la
clínica.
Lección 2. Patologías mitocondriales.
Lección 3. Radicales libres y enfermedad.
Lección 4. Bases moleculares del envejecimiento.
Lección 5. Bases moleculares de las enfermedades neurodegenerativas:
Enfermedad
de Parkinson y Alzheimer.
Lección 6. Efectos de los tóxicos ambientales.
Lección 7. Bases moleculares del cáncer colorrectal.
Lección 8. Bases moleculares del cáncer de mama.
Lección 9. Bases moleculares del cáncer de pulmón.
Lección 10: Aspectos generales de la Nutrición.
Lección 11. Base molecular de la diabetes y de la secreción de insulina.
Lección 12. Bases moleculares de la hipertrofia cardíaca.
Lección 13. Bases moleculares de las infecciones: Tétanos y Botulismo.
Lección 14. Citocinas y caquexia neoplásica.
Lección 15: Bases moleculares de las alergias alimenticias.
Lección 16. Bases moleculares de los cánceres del sistema nervioso.
Lección 17. Bases moleculares de la transformación neoplásica.
Generalidades.
Lección 18. Bases moleculares de las leucemias y linfomas.
Lección 19. Bases moleculares de las enfermedades reumáticas.
Lección 20. Bases moleculares de las discrasias sanguíneas.
Lección 21. Bases moleculares de las enfermedades digestivas.
Lección 22. Bases moleculares de las enfermedades renales.
Lección 23. Nuevos avances en la biología molecular de la inflamación.
Lección 24. Genes cancerígenos: Del descubrimiento a la aplicación clínica.
Lección 23. Perspectiva de la terapéutica génica.

Actividades

PROGRAMA DE SEMINARIOS
• Métodos para extracción y conservación de muetras biológicas.
• Reacción en cadena de la polimerasa: Aspectos metodológicos y
diagnósticos.
• Tecnología del DNA recombinante.
• Técnicas de detección de apoptosis.
• Cultivos celulares.
• Determinación de oncogenes con utilidad en el diagnóstico clínico.

Metodología

- Se impartirán clases teóricas en el horario dispuesto por la Facultad de
Medicina. En ellas, durante una hora y 45 minutos, se expondrá el
contenido
teórico de cada lección, para en el tiempo restante realizar la discusión
de
lo comentado y tener en cuenta las inquietudes de los alumnos.
- Se impartirán Seminarios complementarios a los contenidos teóricos.
- Se hará uso de CAMPUS VIRTUAL, mediante la plataforma MOODLE para
tutorías
electrónicas, adquisición de material pedagógico, etc.

TUTORÍAS
• Electrónicas: A través de la plataforma CAMPUS VIRTUAL.
• Presenciales.

Criterios y Sistemas de Evaluación

• Trabajo de revisión bibliográfica.

Recursos Bibliográficos

Bioquímica Clínica. GAW, A. Elsevier, 2000.
Bioquímica. DEVLIN TM. 4ª. Reverté, 2004.
Introducción a la Bioquímica Clínica. PERÁN MESA, S. Universidad de Málaga.
Bioquímica Clínica. GONZALEZ DE BUITRAGO, J.. McGraw Hill, 1998.
Molecular and cell biology. Ed. Interamericana.Patología Molecular.
GONZALEZ DE
BUITRAGO, J. McGraw Hill/ Interamericana de
España, 2001.
Bioquímica Médica. BAYNES, J.W., DOMINICZAK, M. H. 2ª. Elsevier/Mosby,
2006.

Profesorado

Manuel Jesus Martínez Valdivia

Objetivos

Comprender los principios básicos de la  estructura y función  de los ácidos
nucléicos, su regulación y los principales enzimas y factores implicados.
Describir los métodos básicos del aislamiento y manipulación del ADN en general
y de los genes en particular.  Describir las principales aplicaciones
biotecnológicas de la metodología del ADN recombinante.
Saber analizar mediante métodos básicos secuencias de ADN y conocer las
aplicaciones bioinformáticas más generales en el área de la biología molecular.

Programa

1. ESTRUCTURA Y DINAMICA DE  LOS ACIDOS NUCLEICOS
Bases, nucleósidos y nucleótidos, enlaces químicos en el DNA y RNA. Adsorción
en el UV : efecto hipercrómico. Bases modificadas en el DNA . Metilación del
DNA. Estructura de Watson y Crick: tipos de enlaces. Interacciones no
covalentes en el DNA. Formas del DNA : B,A,Z,H. Tamaño del DNA. Tipos de
secuencias : simples, repetidas, satélites, SINES. LINES, Alu, palíndromos.
Organización del genoma. Modelo de estructura del cromosoma eucariota.
Estructura de la cromatina : el nucleosoma. Proteínas histonas : modificaciones
postranslacionales.  Estructura del RNA : bases modificadas. Hidrólisis
alcalina del RNA. Procesos de desnaturalización y renaturalización del DNA.
Cot.  Nucleasas.
2. REPLICACION
Experimentos clásicos : Hersley-Chase; Avery-McLeod; Cairns; Mendelson-Stahl.
Química de la replicación. Replicación semiconservativa y bidireccional. DNA
polimerasas en E.coli. Enzima de Kornberg: actividades. Fragmento Klenow.
Origen de replicación : oriC. Iniciación en E.coli: helicasas, girasa,
proteínas ssB. Replisoma : Polimerasa III,  primasa,
fragmentos de Okazaki.  Polimerasa I. DNA ligasa. Múltiples orígenes en
eucariotas. Replicación en los telómeros: telomerasa. Fidelidad de la
replicación. Replicación de la cromatina. Replicación del DNA mitocondrial.
Replicación de virus RNA: replicasas. Replicación de retrovirus: transcriptasa
inversa, integrasa. Inhibición de la replicación.
3. MUTACION, REPARACION Y MODIFICACION DEL GENOMA
Tipos de de mutaciones y principales mutágenos. Modificaciones químicas en el
DNA: desaminación, depurinización. Mecanismos de reparación directa:
fotoreactivavción, metil guanina metiltransferasa. Reparación por ruptura de
bases. Reparación por ruptura de nucleótidos. Sistema de reparación Mut
bacteriano. Reparación por recombinación. Defectos en la reparación del DNA :
enfermedades. Recombinación homóloga. Modelos: copia, ruptura y reunión.
Sistema de recombinación Rec bacteriano. Recombinación  no homóloga específica
de lugar. Integración de lambda en E.coli. Reordenamientos genómicos:
movimiento, duplicación y amplificación del DNA. Recombinación no específica de
lugar. Transposones. Retrotransposones I y II. Retrogenes.
4. TRANSCRIPCION EN PROCARIOTAS
Química y enzimología de la transcripción. RNA polimerasas. Iniciación :
secuencias cis y burbuja de iniciación, factor sigma. Elongación: modelos de
avance.Terminación : secuencias GC y factor Rho. Inhibición de la
transcripción. Regulación : concepto de operón. Operón lac : operador y genes
estructurales. Represor, inductor, co-represor, represión catabólica, CAP-cAMP.
Operón de la arabinosa. Operón del triptófano : atenuación. Procesamiento y
maduración del rRNA y tRNA procariota. RNAsas. Ribozimas.
5. TRANSCRIPCION EN EUCARIOTAS
RNA polimerasas. Diferencias generales con procariotas. Factores de iniciación,
elongación y terminación. Promotor de la polimerasa II: secuencias cis.
Factores TFII, TBP y TAFs. CAP y poliadenilación del RNA mensajero :
guanililtransferasa y poli-A-polimerasa. Procesamiento del RNA mensajero:
spliceosoma. Splicing alternativo. Unidades transcripcionales. Promotor de la
polimerasa I. Factores TFI, SL1 y UBF. Transcripción por la polimerasa III,
factores TFIII. Transcripción mitocondrial. Procesamiento del RNA ribosómico y
transferente.
6. SINTESIS DE PROTEINAS
El código genético. Modificaciones al código general. Aminoacil tRNA
sintetasas. Iniciación
en procariotas. Secuencia Shine-Dalgano. Formil metionil tRNA. Factores de
iniciación Ifs.  Fase de elongación. Peptidil transferasa. Factores EF y
translocación. Terminación. Balance energético de la biosíntesis de proteínas.
Corrección de errores durante el proceso de síntesis. Inhibición de la síntesis
de proteínas. Fases finales de la síntesis: plegado de la cadena y modificación
covalente. Modelo de secreción de proteínas en procariotas.  Diferencias en la
biosíntesis en eucariotas : factores eIFs e iniciación, factores eEFs y RFs.
7. CONTROL REGULACION Y EXPRESION GENETICA EN EUCARIOTAS
Secuencias cis y factores trans. Secuencias reguladoras o enhancers..
Activadores y represores de la transcripción. Motivos estructurales de los
factores de transcripción: homeodomain, dedos de zinc, cremalleras de leucina,
hélice-lazo-hélice. Modificaciones postranslacionales de las proteínas :
fosforilaciones, glicosilaciones, formación de puentes disulfuro,
ribosilaciones, farnesilaciones. Reconocimiento del péptido de señal, partícula
SRP. Vida media de las proteínas. Ubiquitinización.
8. METODOS EXPERIMENTALES EN BIOLOGIA MOLECULAR
Aislamiento, purificación y cuantificación de DNA y RNA. Análisis
electroforético. Síntesis de oligonucleótidos. Enzimas de modificación:
restricción, transferasa terminal, nucleasa S1, ligasa, DNA polimerasa,
polinucleótido quinasa, Fosfatasa alcalina. Mapa de restricción del DNA. Vectores
de clonación: plásmidos, fagos, cósmidos, BACs, YACs. Adaptadores. Clonaje
molecular. Transformación bacteriana: resistencia a antibióticos, tipos y
características de células huésped. Electroporación. Genotecas: genómicas y de
expresión. Muestreo en el clonaje de genes: estrategias. Marcaje de sondas: alfa
dNTP, gamma dNTP, marcaje no radiactivo. Técnicas de hibridación: Southern,
Northern, FISH. Secuenciación de DNA. PCR. Mutagénesis. Expresión de proteínas:
vectores, proteínas de fusión. Transfección de DNA. EMSA. Footprinting. RNA
interferente. Análisis de promotores e inicio de la transcripción. Análisis de
proteínas: electroforesis, western blot, inmunoprecipitación,
inmunofluorescencia. Cromatografias de filtración y de intercambio iónico.
Cromatografía de afinidad DNA-proteína. Ensayo de unión proteína-proteína.
Microarrays.
9. APLICACIONES DE LA BIOLOGIA  MOLECULAR Y LA BIOTECNOLOGIA
Producción de proteínas recombinantes:  hormona del crecimiento, insulina.
Producción de hibridomas: anticuerpos monoclonales. Aplicaciones de la Biología
Molecular a la generación de vacunas.   Diagnóstico genético de enfermedades:
variaciones experimentales. Polimorfismo genético : taxonomía molecular,
identificación de la paternidad,  aplicaciones a la medicina forense y policial.
Terapia génica: taxis o vectores genéticos. Organismos transgénicos. Clonación de
células y organismos. Proyectos genoma: la genómica y la proteómica.
Biotecnología de plantas: plásmido Ti, aplicaciones biotecnológicas.
Biodegradación de xenobióticos. Bioética. Patentes en biotecnología.

PROGRAMA DE PRACTICAS
1. Aislamiento de ADN plasmídico.
2. Purificación de ADN genómico.
3. Digestión con enzimas de restricción y nucleasas.
4. Amplificación de un fragmento de ADN por PCR.
5. Análisis electroforético en geles de agarosa.

6. Bioinformática. Empleo de bases de datos en Biología Molecular

Actividades

Realización de una Memoria que abarca por un lado los resultados de las Prácticas
de Laboratorio y a su vez contiene unos Ejercicios prácticos sobre los contenidos
de la Clase de Bioinformática.

Metodología

Sesiones practicas desarrolladas en el laboratorio. Sesión en el aula de
informática. Clases teóricas sobre el programa de la asignatura.

Criterios y Sistemas de Evaluación

Asistencia realización y aprovechamiento de las prácticas. Examen final: Se
realizará un examen compuesto por varias preguntas relativas al programa
teórico y en la calificación final de la asignatura las practicas realizadas
contabilizarán hasta un 20% de la calificación final

Recursos Bibliográficos

MOLECULAR BIOLOGY OF THE CELL  4ª ed.  2002  B. Alberts ….
Garland Science          ISBN  0815332181
BIOLOGIA CELULAR Y MOLECULAR  4ª ed.  2002  H. Lodish
Scientific American Books
GENES VIII               2003  B. Lewin
Prentice Hall    ISBN  0131439812
MOLECULAR BIOLOGY OF THE GENE  5ª ed.  2004  J. Watson……
Benjamin Cummings    ISBN  080534635X
MOLECULAR BIOTECHNOLOGY    3ª ed.   2003   B. R, Glick…..
ASM Press                   ISBN  1555812244
BIOCHEMISTRY      3ª ed.   2002   C.K. Mathews…..
Addison Wesley            ISBN  0805330666
BIOCHEMISTRY       5ª  ed.   2002  J.M. Berg……
Reverté                          ISBN   07167300510
INTRODUCTION TO BIOTECHNOLOGY  1ª  ed.   2003  W.J. Thieman…..
Benjamin Cummings       ISBN  0805348255
BASIC LABORATORY METHODS FOR BIOTECHNOLOGY  1ª  ed.   2000   L.A. Seidman…..
Prentice Hall                   ISBN  0137955359

Profesorado

Manuel Jesus Martínez Valdivia
Antonio Astola Gonzalez

Situación

Prerrequisitos

Los alumnos que cursen la asignatura deben tener conocimientos suficientemente
amplios de Biología y Química general adquiridos en asignaturas previamente
cursadas en cursos iniciales de titulaciones universitarias.

Contexto dentro de la titulación

La asignatura se integra y coordina con diversas materias con contenidos
biológicos y abarca los fundamentos, técnicas y aplicaciones de la Biología
Molecular y de la Biotecnología con especial interés a las especies del mundo
marino y su medio ambiente.

Recomendaciones

Los alumnos deben tener como complemento indispensable,  conocimientos
generales de ciencias como la Bioquímica, Microbiología y la Genética. Así
mismo es imprescindible el conocimiento básico del idioma inglés a nivel de
lectura para la adquisición y asimilación de la información bibliográfica más
actualizada de la Biología Molecular y sus aplicaciones en la Biotecnología

Competencias

Competencias transversales/genéricas

Capacidad de análisis, asimilación y discusión de trabajos científicos y
materias teóricas generales del área de la Biología en general y la Bioquímica
y Biología Molecular en particular. Para ello se requiere un conocimiento
básico del inglés científico, y  la posibilidad del uso de la consulta
bioinformática a través de las web especializadas en la materia.

Competencias específicas

• Cognitivas(Saber):

  Conocer las fuentes principales de información científica más
  usualmente empleadas para la acumulación y exposición informática de
  la bibliografía y experimentación en Biología Molecular.
  Saber analizar las estructuras, sistemas, tecnologías y posibles
  aplicaciones prácticas en numerosos campos de los conceptos básicos
  de estudio en la Biología Molecular.
  
  

• Procedimentales/Instrumentales(Saber hacer):

  Destreza en el aprendizaje de nuevas técnicas para el alumno en el
  laboratorio de Biología Molecular.
  Utilización efectiva y capacidad de selección de la bioinformación a
  partir de las múltiples páginas web disponibles.
  

• Actitudinales:

  Habilidad intelectual y capacidad de organización para desenvolverse
  en un laboratorio básico de Biología Molecular.
  Capacidad de síntesis y planificación del trabajo diario sobre el
  programa y tareas de la asignatura.
  
  

Objetivos

Proporcionar al alumno los conocimientos teóricos y prácticos básicos que le
permitan:
- Asimilar y desarrollar conceptos fundamentales sobre la Biología Molecular de
las proteínas y los ácidos nucleicos.
- Establecer las bases moleculares sobre la estructura de los genomas y los
genes y analizar los mecanismos celulares de la expresión y regulación génica.
-  Conocer  las principales técnicas experimentales en el análisis de
proteínas y ácidos nucléicos en el ámbito de la Biología Molecular.
-  Exponer las principales aplicaciones moleculares de las tecnologías del
ADN recombinante en el campo biotecnológico con especial incidencia en el mundo
marino.

Programa

Unidad Temática I    :  Estructura y Dinámica de los Acidos Nucléicos
Bases, nucleósidos y nucleótidos, enlaces químicos en el DNA y RNA. Adsorción
en el UV : efecto hipercrómico. Bases modificadas en el DNA . Metilación del
DNA. Estructura de Watson y Crick: tipos de enlaces. Interacciones covalentes
en el DNA. Formas del DNA : B,A,Z,H. Tamaño del DNA. Tipos de secuencias :
simples, repetidas, satélites, SINES. LINES, Alu, Organización del genoma.
Modelo de estructura del cromosoma eucariota. Estructura de la cromatina : el
nucleosoma. Proteínas histonas : modificaciones postranslacionales.  Estructura
del RNA : bases modificadas. Hidrólisis alcalina del RNA. Procesos de
desnaturalización y renaturalización del DNA. Cot.  Nucleasas.

Unidad Temática II   :  Replicación de los Genomas
Experimentos clásicos : Hersley-Chase; Avery-McLeod; Cairns; Mendelson-Stahl.
Química de la replicación. Replicación semiconservativa y bidireccional. DNA
polimerasas en E.coli. Enzima de Kornberg: actividades. Fragmento klenow.
Origen de replicación : oriC. Iniciación en E.coli: helicasas,girasa,
proteínas ssB. Replisoma : Polimerasa III,  primasa, fragmentos de Okazaki.
Polimerasa I. DNA ligasa. Múltiples orígenes en eucariotas. Replicación en los
telómeros: telomerasa. Fidelidad de la replicación. Replicación de la
cromatina. Replicación del DNA mitocondrial.
Replicación de virus RNA: replicasas. Replicación de retrovirus: transcriptasa
inversa, integrasa. Inhibición de la replicación.

Unidad Temática III  :  Mutación, Reparación y Modificación del Genoma
Tipos de de mutaciones y principales mutágenos. Modificaciones químicas en el
DNA: desaminación, depurinización. Mecanismos de reparación directa:
fotoreactivavción, metil guanina metiltransferasa. Reparación por ruptura de
bases. Reparación por ruptura de nucleótidos. Sistema de reparación Mut
bacteriano. Reparación por recombinación. Defectos en la reparación del DNA :
enfermedades. Recombinación homóloga. Modelos: copia, ruptura y reunión.
Sistema de recombinación Rec bacteriano. Recombinación  no homóloga específica
de lugar. Integración de lambda en E.coli. Reordenamientos genómicos :
movimiento, duplicación y amplificación del DNA. Recombinación no específica de
lugar. Transposones. Retrotransposones I y II. Retrogenes.

Unidad Temática IV  :  Transcripción en Procariotas y Regulación Génica.
Química y enzimología de la transcripción. RNA polimerasas. Iniciación :
secuencias cis y burbuja de iniciación, factor sigma. Elongación: modelos de
avance.Terminación : secuencias GC y factor Rho. Inhibición de la
transcripción. Regulación : concepto de operón. Operón lac : operador y genes
estructurales. Represor, inductor, co-represor, represión catabólica, CAP-cAMP.
Operón de la arabinosa. Operón del triptófano : atenuación. Procesamiento y
maduración del rRNA y tRNA procariota. RNAsas. Ribozimas.

Unidad Temática V    : Transcripción en Eucariotas. RNA polimerasas.
Diferencias generales con procariotas. Factores de iniciación,
elongación y terminación. Promotor de la polimerasa II: secuencias cis.
Factores TFII, TBP y TAFs. CAP y poliadenilación del RNA mensajero :
guanililtransferasa y poli-A-polimerasa. Procesamiento del RNA mensajero:
spliceosoma. Splicing alternativo. Unidades transcripcionales. Promotor de la
polimerasa I. Factores TFI, SL1 y UBF. Transcripción por la polimerasa III,
factores TFIII. Transcripción mitocondrial. Procesamiento del RNA ribosómico y
transferente.

Unidad Temática VI  :  Biosíntesis de Proteínas
El código genético. Modificaciones al código general. Aminoacil tRNA
sintetasas. Iniciación en procariotas. Secuencia Shine-Dalgano. Formil metionil
tRNA. Factores de iniciación Ifs.  Fase de elongación. Peptidil transferasa.
Factores EF y translocación. Terminación. Balance energético de la biosíntesis
de proteínas.  Corrección de errores durante el proceso de síntesis. Inhibición
de la síntesis de proteínas. Fases finales de la síntesis: plegado de la cadena
y modificación  covalente. Modelo de secreción de proteínas en procariotas.
Diferencias en la biosíntesis en eucariotas : factores eIFs e iniciación,
factores eEFs y RFs.

Unidad Temática VII :  Control, Regulación y Expresión Génica en Eucariotas
Secuencias cis y factores trans. Secuencias reguladoras o enhancers.
Activadores y represores de la transcripción. Motivos estructurales de los
factores de transcripción: homeodomain, dedos de zinc, cremalleras de leucina,
hélice-lazo-hélice. Modificaciones postranslacionales de las proteínas :
fosforilaciones, glicosilaciones, formación de puentes disulfuro,
ribosilaciones, farnesilaciones. Reconocimiento del péptido de señal, partícula
SRP. Vida media de las proteínas. Ubiquitinización.

Unidad Temática VIII : Tecnología del ADN Recombinante
Purificación,  Cuantificación, y Análisis electroforético de RNA y DNA.
Síntesis de   oligonucleótidos. Mapa de restricción de DNA. Plásmidos y fagos.
Resistencia a antibióticos. Células huésped: E.coli. Enzimas de modificación :
restricción,  transferasa terminal, nucleasa S1. Adaptadores.  Clonaje. DNA
ligasa. Transferasa terminal. Fragmento klenow. Polinucleótido kinasa y
fosfatasa alcalina. Transformación: electroporación. Vectores : pUC, pBS,
lambda, cósmidos, YACs, BAC, PAC.. Genotecas : expresión y genómicas. Muestreos
en el clonaje de secuencias de DNA y cDNAs. Marcaje radiactivo : alfa dNTP,
gamma dNTP. Marcaje no radiactivo : biotina dUTP, avidina. Secuenciación.
Hibridación Southern y Northern. Hibridación in situ. FISH. Amplificación de
ácidos nucleicos: PCR, RT-PCR. Mutagénesis dirigida.  Expresión de proteínas :
vectores de expresión, sistemas en E.coli y baculovirus. Proteínas de fusión.
Ingeniería de proteínas :modificaciones. Transfección de DNA. EMSA.
Fingerprinting. RNAi. RNA anti-sentido. Técnica del knock-out. Proyectos
Genoma : genómica y proteómica.

Unidad Temática IX    : Aplicaciones biotecnológicas de la Biología Molecular
Producción de proteínas recombinantes : insulina, hormona del crecimiento,
anticuerpos. Diagnóstico genético de enfermedades. Identificación Molecular de
agentes  infecciosos y contaminantes. Diagnóstico de paternidad. Terapia
génica: taxis genéticos, cromosomas artificiales. Taxonomía      molecular.
Organismos  transgénicos. Clonación de células. Clonación de organismos
Biotecnología de plantas: empleo del  plásmido Ti y sus aplicaciones
biotecnológicas. Bioética. Patentes en biotecnología.

Prácticas.

a) Laboratorio de experimentación .
Realización de las siguientes prácticas :
- Aislamiento de DNA plasmídico.
- Purificación de DNA genómico.
- Digestión con enzimas de restricción y nucleasas.
- Amplificación de un fragmento de DNA por PCR.
- Análisis electroforético de DNA en geles de agarosa.

b) Bioinformática.
Consulta de las bases de datos del ncbi y EMBO. Búsqueda bibliográfica:
autores, temas específicos, laboratorios  etc. Comparación de secuencias de
proteínas, y ADN. Homología de secuencias. Taxonomía Molecular.  Proyectos
genoma. Consulta de  revistas y libros on line.

Actividades

Realización de programa de prácticas en el laboratorio y ejercicios prácticos
de aprendizaje del uso de las  bases de bioinformática con aplicación en la
experimentación en Biología Molecular

Metodología

Sesiones practicas desarrolladas en el laboratorio. Sesión en el aula de
informática. Clases teóricas sobre el programa de la asignatura

Distribución de horas de trabajo del alumno/a

Nº de Horas (indicar total): 160

• Clases Teóricas: 31,5  
• Clases Prácticas: 10,5  
• Exposiciones y Seminarios:  
• Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales):
  • Colectivas: 3  
  • Individules:  
• Realización de Actividades Académicas Dirigidas:
  • Con presencia del profesorado: 3  
  • Sin presencia del profesorado: 12  
• Otro Trabajo Personal Autónomo:
  • Horas de estudio: 55 (47+8)  
  • Preparación de Trabajo Personal: 29  
  • ...

    preparación de
    examen: 14

     
• Realización de Exámenes:
  • Examen escrito: 2  
  • Exámenes orales (control del Trabajo Personal):  

Técnicas Docentes

Criterios y Sistemas de Evaluación

•Asistencia y participación en las clases teóricas presenciales y clases
prácticas
•Realización de un examen sobre los contenidos de las clases presenciales
•Realización de una memoria sobre las prácticas
•Valoración en su caso de un trabajo autorizado y académicamente dirigido.

Criterios de evaluación y calificación (referidos a las competencias trabajadas
durante el curso):

•   La asistencia a las clases presenciales contribuirán a la calificación
global con un 5%.
•   El examen sobre los contenidos de las clases presenciales supondrá un
70%.
•   La memoria de prácticas y los trabajos sobre actividades dirigidas y
autorizadas alcanzará el 25% de la nota final.de la nota final.

•   El empleo del aula virtual servirá como herramienta útil para la
evaluación global del trabajo y conocimientos adquiridos por el alumno.

Recursos Bibliográficos

4.1 GENERAL

Molecular Biology of the Gene  Watson etal. 2004   CSHL Press
Biología Molecular de la Célula.  Alberts et al.   2004
Genes VII.   Lewin   2000
The Cell . A Molecular Approach.    Cooper    2000
Molecular Biotechnology  Glick et al.  1994  ASM Press
Recombinant DNA .   Watson   1992
Bioquímica.  Stryer y col.    2003
Biochemistry.  Berg et al.    2002
Bioquímica.  Voet y col.     1998
Bioquímica.  Mathews  y col. 2003  Addison Wesley

Profesorado

MANUELA ORTIZ SANTESTEBAN

Situación

Prerrequisitos

No existen prerrequisitos de acuerdo con el plan de estudios vigente,
aunque
los alumnos deben tener conocimientos suficientemente amplios de
Biología y de
Química general.

Contexto dentro de la titulación

Es la primera asignatura de éste área que se imparte en la titulación.
Está
relacionada con la Química Orgánica en lo referente a la estructura
química de
las biomoléculas, pero alcanza conocimientos más profundos de
metabolismo y
sobre todo de regulación del mismo. Asimismo se dan conocimientos de
Biología
Molecular de los ácidos nucleicos. Por otra parte asienta las bases
para la
siguiente asignatura del área que es "Laboratorio Integrado de
Bioquímica y
Toxicología".

Recomendaciones

Los alumnos deben tener como complemento indispensable conocimientos
generales
de Química orgánica. Se recomienda la asistencia a las clases
presenciales de
teoría para así asentar las bases teóricas,cada semana, de lo que
serán las
clases presenciales prácticas.

Competencias

Competencias transversales/genéricas

Capacidad de razonamiento y asimilación de las materias que se tratan.
Capacidad de análisis y de síntesis.Capacidad de organización y
planificación
del tiempo de las actividades no presenciales.

Competencias específicas

• Cognitivas(Saber):

  Tipos principales de reacciones químicas y sus principales
  características asociadas. Cinética del cambio químico incluyendo
  los mecanismos de reacción. Naturaleza y comportamiento de los
  grupos funcionales en moléculas orgánicas. Estructura y reactividad
  de las principales clases de biomoléculas y la química de los
  principales procesos biológicos.

• Procedimentales/Instrumentales(Saber hacer):

  Capacidad para demostrar el conocimiento y comprensión de los hechos
  esenciales de la vida de los organismos.
  Capacidad de resolución de problemas reales que se pueden presentar
  dependiendo del estado de los organismos. Destreza en el aprendizaje
  de técnicas bioqímicas para el estudio de proteínas y ácidos
  nucléicos.

• Actitudinales:

  Habilidad intelectual y capacidad de organización. Capacidad de
  síntesis y planificación del trabajo diario sobre el programa y
  tareas de la asignatura.

Objetivos

Proporcionar a alumno los conocimientos teóricos básicos que le permitan
asimilar y desarrollar conceptos fundamentales de la organización y
comportamiento a nivel molecular de los seres vivos.Llegar a comprender la
estructura, organización y funciones de la materia viva
en términos moleculares. Estudiar de qué forma interactúan los componentes
de
la materia viva para dar lugar a estructuras supramacromoleculares.

Programa

I. INTRODUCCIÓN A LA BIOQUÍMICA
1.El alcance de la Bioquímica. Introducción general a la célula.
2.Biomoléculas.
II. ESTRUCTURA DE LAS BIOMOLÉCULAS
3.Introducción a las proteínas: nivel primario de la estructura protéica.
4.Estructura tridimensional de las proteínas.
5.Clasificación y características funcionales de las proteínas.
6.Hidratos de carbono y glicoproteínas.
7.Lípidos y membranas biológicas. Transporte celular.
8.Acidos nucleicos y nucleoproteínas.
III. ENZIMAS
9.Generalidades de enzimas. Catálisis enzimática. Cinética e inhibición.
10.Mecanismos de acción enzimática.
11.Regulación de la actividad de los enzimas.
IV. METABOLISMO Y ENERGÉTICA
12.Introducción al metabolismo. Bioenergética.
13.Metabolismo de hidratos de carbono. Procesos anaerobios en la
generación de
energía metabólica: glucólisis y fermentaciones.
14.Biosíntesis de hidratos de carbono. Gluconeogénesis. Metabolismo del
glucógeno.
15.Procesos oxidativos: ciclo del ácido cítrico y ruta de las pentosas
fosfato.
16.Transporte electrónico y fosforilación oxidativa.
17.Metabolismo de lípidos. Oxidación y biosíntesis de ácidos grasos.
18.Metabolismo de aminoácidos.
19.Metabolismo de nucleótidos.
20.Coordinación metabólica, control metabólico y transducción de señales
V. BIOLOGÍA MOLECULAR DEL DNA
21.Replicación del DNA.
22.Transcripción y procesamiento del RNA.
23.Traducción del RNA: biosíntesis de proteínas.
VI. METODOLOGÍA BIOQUÍMICA
24. Métodos para el estudio de proteínas.
25. Métodos para el estudio de ácidos nucleicos

Actividades

Actividades académicas dirigidas:
- Búsqueda de información en relación con las aplicaciones prácticas en
el
contexto de la Bioquímica
- Exposición oral y debate de esa búsqueda

Metodología

- Clases expositivas de teoría.
- Clases de refuerzo de la teoría en las que se realizarán problemas,
cuestiones y exposiciones dentro de la potenciación de las enseñanzas
prácticas.

Distribución de horas de trabajo del alumno/a

Nº de Horas (indicar total): 205,6

• Clases Teóricas: 42,0  
• Clases Prácticas: 5,0  
• Exposiciones y Seminarios: 25,0  
• Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales):
  • Colectivas: 4,0  
  • Individules: 4,0  
• Realización de Actividades Académicas Dirigidas:
  • Con presencia del profesorado: 8,0  
  • Sin presencia del profesorado: 2,0  
• Otro Trabajo Personal Autónomo:
  • Horas de estudio: 77,3  
  • Preparación de Trabajo Personal: 34,3  
  • ...
     
• Realización de Exámenes:
  • Examen escrito: 4,0  
  • Exámenes orales (control del Trabajo Personal):  

Técnicas Docentes

Sesiones de resolución de problemas individualmente o en
grupos

Criterios y Sistemas de Evaluación

1. Asistencia y participación en las sesiones del programa de iniciativa
PEP.
2. Resolución por escrito de algunas cuestiones y problemas.
3. Realización y superación de un examen escrito sobre los contenidos de
la
asignatura.
La nota final de la asignatura se compone de:
- Examen final de la asignatura: 70 %
- Actividades dirigidas propuestas por el profesor:30%

Recursos Bibliográficos

1. "Bioquímica" L. Stryer. Ed. Reverté 2008
2. "Bioquímica" Mathews van Holde. Ed. Addison-Wesley 2002
3. "Principios de Bioquímica" L. Lehninger. Ed. Omega 1993
4. "Bioquímica" J.D. Rawn. Ed. Interamericana 1989
5. "Bioquímica: la base molecular de la vida" T. Mckee. Ed. Mc Graw-Hill
2003

Profesorado

Carlos Pendón Meléndez (Responsable)

Situación

Prerrequisitos

Haber cursado previamente una asignatura de Bioquímica General

Contexto dentro de la titulación

La Bioquímica es una de las ciencias básicas en las que se apoya la
Enología.
La mayor parte de los procesos biológicos que ocurren durante le
proceso de
fabricación de los vinos son bioquímicos, de ahi que se hace necesario
que el
Enólogo tenga una adecuada formación en Bioquímica

Recomendaciones

En caso de no haber cursado un asignatura de Bioquímica seguir una
signatura
de Bioquímica de Nivelación previa al comienzo del curso

Competencias

Competencias transversales/genéricas

Proponer mejoras con base bioquímica en la Bodega
Dar respuestas bioquímicas a problemas relacionados con la fabricación
del vino
Dirigir y trabajar con un equipo multidisciplinar.

Competencias específicas

• Cognitivas(Saber):

  Describir la composición bioquímica de la uva
  Describir el proceso de maduración de la uva
  Describir el metabolismo de la levadura durante la fermentación
  Describir qué procesos bioquímicos se asocian con cada tipo de
  vinificación
  Describir otras fermentaciones relacionadas con la fabricación de
  vinos
  Describir la bioquímica de las alteraciones del vino
  Describir las herramientas bioquímicas que se pueden utilizar en la
  fabricación del vino
  

• Procedimentales/Instrumentales(Saber hacer):

  Analizar componentes bioquímicos de la uva
  Analizar componentes bioquímicos del vino
  Utilizar enzimas para fabricar vinos
  

• Actitudinales:

  Demostrar el manejo de bibliografía actualizada en Bioquímica
  Expresarse correctamente en términos bioquímicos relacionados con la
  fabricación de vinos
  Desarrollar y Exponer en público un tema relacionado con la
  bioquímica y la enología
  

Objetivos

Los alumnos deberán ser capaces de:
•Conocer a nivel bioquímico los procesos de crecimiento, maduración de la
uva y los procesos de vinificación y crianza biológica.
•Conocer las técnicas básicas de trabajo en el laboratorio de
Bioquímica.
• Estar familiarizado y saber manejar las fuentes de información
originales en Bioquímica
• Deberá desarrollar espíritu crítico en el ámbito de la Bioquímica
Enológica.
• Deberá exponer y analizar con espíritu crítico un trabajo
original en el ámbito de la Bioquímica Enológica

Programa

PROGRAMA DE LAS CLASES DE TEORÍA

El programa está dividido en 4 Partes:
I.  INTRODUCCIÓN
II.  ESTRUCTURA,COMPOSICIÓN BIOQUÍMICA y MADURACIÓN DE LA UVA
III.  BIOQUÍMICA DE LAS FERMENTACIONES, LA VINIFICACIÓN Y LA CRIANZA
BIOLÓGICA
IV.  APLICACIONES BIOQUÍMICAS A LA PRODUCCIÓN DEL VINO

Cada una de estas partes incluyen los temas y capítulos que se detallan a
continuación:
I.  INTRODUCCIÓN
TEMA 1.  Conceprtos preliminares
1.1.  La Bioquímica y la Enología.

II.  ESTRUCTURA,COMPOSICIÓN BIOQUÍMICA y MADURACIÓN DE LA UVA
TEMA 2.  Estructura del Grano de uva
2.1.  Estructura de la baya.

TEMA 3.  Composición Bioquímica y maduración de la uva
3.1.  Glúcidos
3.2.  Lípidos
3.3.    Compuestos Nitrogenados
3.4.  Otros compuestos

III.  BIOQUÍMICA DE LAS FERMENTACIONES, LA VINIFICACIÓN Y LA CRIANZA
BIOLÓGICA
TEMA 4.  Rutas Centrales del Metabolismo
4.1     Introducción general al metabolismo
4.2.  Rutas centrales del metabolismo energético I.
4.3.  Rutas centrales del metabolismo energético II.

TEMA 5.  Bioquímica de las fermentaciones
5.1.  Fermentación Alcoholica
5.2.  Otras fermentaciones.
5.3.  Metabolismo de compuestos nitrogenados y su importancia enológica.
5.4.  Metabolismo de los compuestos azufrados y su importancia enológica
5.5.    Fermentación endógena del grano de uva

TEMA 6.  Bioquímica de la vinificación y la crianza biológica
6.1.   El fenómeno de la autolisis de las levaduras.
6.2.   Bioquímica de los distintos tipos de vinificación.
6.3.   Bioquímica de vinificaciones especiales.

IV.  APLICACIONES BIOQUÍMICAS A LA PRODUCCIÓN DEL VINO
TEMA 7. Enzimas y Enología
7.1    Enzimas utilizados en la fabricación de los vinos.

PROGRAMA DE LAS CLASES DE PRÁCTICAS

La asignatura de Bioquímica Enológica tiene asignada 2,5 créditos de
clases
prácticas. Esto supone un total de 25 horas a lo largo del desarrollo del
curso. El programa se divide en dos tipos de actividades: sesiones de
trabajo
en el laboratorio y seminarios. Cada  una de estas actividades se
desarrollaría
de la siguiente
manera:
i)  Sesiones de trabajo en el laboratorio: cinco sesiones de cuatro
horas
de duración cada una. Esto supone un total de 20 horas (2,0 créditos), que
se
impartirían, de forma continuada, durante una semana.
ii)  Sesiones de seminarios bibliográficos: cinco sesiones de una hora
de
duración cada una, lo que supone un total de 5 horas de clase (0,5
créditos)
que  se impartirían durante todo el curso.
i) Programa de las sesiones de trabajo en el Laboratorio:
•  Cuantificación de proteínas: método de Lowry  y método de Bradford
•  Análisis electroforético de las proteínas presentes en las
distintas
muestras.
•  Análisis enzimático de distintos ácidos presentes en el vino
(ácido
málico, ácido láctico, acético, L-ascórbico, cítrico, glucónico, succínico)
•  Análisis enzimático de acetaldehído, etanol y glicerol
•  Análisis cuantitativo y cualitativo de lípidos presentes en
distintas
muestras
•  Análisis de azúcares reductores totales
•  Análisis enzimático de D-glucosa/D-fructosa.
•  Análisis enzimático de Sacarosa/D-glucosa
•  Determinación de la actividad oxidásica en mostos y vinos
•  El ordenador como herramienta de trabajo en Bioquímica

ii) Programa  de los seminarios Bibliográficos
Los sesiones de seminarios bibliográficos están encaminados a desarrollar
un
hábito de lectura de trabajos de investigación originales. Este hábito
redundará en el desarrollo de un espíritu crítico por parte del alumno. La
exposición del trabajo permitirá al alumno enfrentarse a hablar en público.

Las sesiones de seminarios se plantean como la exposición, al resto de los
componentes de la clase, de un trabajo de investigación, novedoso y
reciente o
de un tema que esté relacionado con la Enología en el ámbito de la
Bioquímica
y la Biología Molecular. Éste dispondrá de un tiempo de 10 - 12 minutos
para
su exposición, tras el cual se abre un período de 5 minutos de discusión
sobre
el mismo.

Los alumnos, mediante los seminarios bibliográficos tienen la oportunidad
de
consultar bibliografía original, profundizar en su entendimiento y
transmitir
la información obtenida a los demás, fomentando así el interés y la
discusión
sobre el trabajo que ha escogido. Es precisamente la técnica, la
profundidad y
la forma como se haya preparado la exposición lo que logrará atraer la
atención del resto de los alumnos hacia el trabajo.

Los temas de los seminarios son de libre elección, con la única condición
que
en ellos se vean reflejados aspectos Bioquímicos y Moleculares con la
Enología. Por ejemplo, estudios sobre los componentes del vino que
presentan
actividad biológica o estudios sobre las capacidades fermentativas de la
levaduras, o mejoras genéticas conseguidas en la vid. Una vez que han
escogido
el trabajo o tema que les puede interesar, el profesor decidirá si es
adecuado
al contexto en el que se desarrolla la asignatura y tras su preparación se
expondrá en clase, tal como he comentado anteriormente.

La exposición de los trabajos es obligatoria, de tal forma que
siempre se valorará positivamente.

Actividades Academicamente Dirigidas
Dentro de este apartado se contempla las siguientes actividades:
·Lecturas obligadas
·Desarrollo de forma individualizada de temas complementarios a los
indicados en el programa de la asignatura
·Tutorías personalizadas de obligado cumplimiento. Serán al menos 3
durante el desarrollo del curso

Actividades

Asistencia a conferencias y visitas a empresas y laboratorios. Todas esta
actividades se organizan desde la coordinación de la Licenciatura
anualmente.

Metodología

Metodología

LECCIÓN
ENSEÑANZA MEDIANTE APRENDIZAJE TUTORADO
APRENDIZAJE BASADO EN PROBLEMAS
Trabajo en el laboratorio

Distribución de horas de trabajo del alumno/a

Nº de Horas (indicar total): 173

• Clases Teóricas: 26  
• Clases Prácticas: 17,5  
• Exposiciones y Seminarios: 1  
• Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales):
  • Colectivas: 5  
  • Individules: 3  
• Realización de Actividades Académicas Dirigidas:
  • Con presencia del profesorado: 16,5  
  • Sin presencia del profesorado: 20  
• Otro Trabajo Personal Autónomo:
  • Horas de estudio: 40  
  • Preparación de Trabajo Personal: 40  
  • ...
     
• Realización de Exámenes:
  • Examen escrito: 2  
  • Exámenes orales (control del Trabajo Personal): 2  

Técnicas Docentes

Tutorías personalizadas. Se pretende determinar el grado de
seguimiento que el alumno hace de los contenidos de la
asignatura y detectar los puntos débiles de su aprendizaje

Criterios y Sistemas de Evaluación

La evaluación de esta asignatura se hará teniendo en cuenta tanto los
conocimientos adquiridos por el alumno como el trabajo personal
desarrollado en la misma. Esto es, la nota final vendrá determinada por el
número de créditos asignado a cada uno de los componentes didácticos en
que he dividido el curso.
Sin embargo al alumno se le exigen en cualquier caso que al menos apruebe
el examen correspondiente a las clases de teoría y que asista
obligatoriamente a las clases de prácticas para tener opción a aprobar. En
la tabla adjunta se detallan los porcentajes de participación de cada uno
de estos componentes en la nota final:

Criterios de Evaluación de la Asignatura Bioquímica Enológica
Actividad    Participación en la nota final
Clases de teorías  Examen *      60 %
Clases prácticas  Asistencia a las sesiones **    5,0 %
Examen de prácticas    3,0 %
Memoria de prácticas    2,0 %
Actividades Academicamente dirigidas
Lecturas obligatorias           10%
Seminarios bibliográficos  15 %
Tutorías personalizadas         5 %
Total              100 %

(*) Para poder aprobar la asignatura es necesario superar el examen de
las clases de teoría con al menos una puntuación de 4 sobre 10.
(**) Para poder aprobar la asignatura es obligatorio asistir a las
sesiones de
prácticas.
Para poder aprobar la asignatura es necesario lograr como mínimo un 40 %
de la nota máxima en cada uno de los apartados calificables.

Recursos Bibliográficos

•  J.A. Suárez Lepe
LEVADURAS VÍNICAS. FUNCIONALIDAD Y USO EN BODEGAS
Ediciones Mundi-Prensa, 1997

•  M. Marro
PRINCIPIOS DE VITICULTURA
Ediciones Ceac, 1989

•  R.Parés y A.Juárez
BIOQUIMICA DE MICROORGANISMOS
Ed. Reverté, 1997

•  Hans-Walter Heldt
PLANT BIOCHEMISTRY AND MOLECULAR BIOLOGY
Oxford University Press, 1997

•  Claude Flanzy
ENOLOGÍA: FUNDAMENTOS CIENTÍFICOS Y TECNOLÓGICOS
AMV Ediciones. Mundi Prensa, 2000

•  J. Azcon-Bieto y M. Talon
FISIOLOGÍA Y BIOQUÍMICA VEGETAL
Ed. Interamericana- McGraw-Hill, 1993

•  Raham H. Fleet
WINE MICROBIOLOGY AND BIOTECHNOLOGY
2 nd edition. Harwood Academic Publishers, 1994

•  R.B. Boulton, V.L. Singleton, L.F. Visón and R.E. Kunkee
PRINCIPLES AND  PRACTICES OF WINEMAKING
An Aspen Publication,1998

•  E. Peynaud
ENOLOGÍA PRACTICA: CONOCIMIENTO Y ELABORACIÓN DEL VINO
3a Ed. Ediciones Mundi-Prensa, 1999

•  J.A. Suarez-Lepe y B. Iñigo-Leal
MICROBIOLOGÍA ENOLÓGICA: FUNDAMENTOS DE VINIFICACIÓN
2a Ed. Ediciones Mundi-Prensa, 1992

•  B.W. Zoeckleing, K.C. Fugelsang, B.H. Gump and F.S. Nury
WINE ANALYSIS AND PRODUCTION
The Chapman and Hall Enology Library, 1995

•  R.S. Jackson
WINE SCIENCE: PRINCIPLES AND APPLICATIONS
Academic Press, 1994

•  C. K. Mathews, K.E. Van Holde, K. G. Ahern.
BIOQUÍMICA
3ª Ed. Addison Wesley, 2002

•  D. Voet, J, Voet
BIOCHEMISTRY
2nd edition. John Wiley and Sons, 1995

•       G.M. Walker
YEAST. PHYSIOLOGY AND BIOTECHNOLOGY
John Wiley and Sons, 1998

•  J.Hidalgo Togores
TREATADO DE ENOLOGÍA TOMOS I Y II
Ediciones Mundi-Prensa, 2003

•  P. Ribereau-Gayon, Y. Glories, A. Maujean, D. Dubourdieu
HANDBOOK OF ENOLOGY, VOL I Y II
J. Wiley and Sons, LTD, 2000 (reimpresión 2004)

Profesorado

Profesor responsable: Jorge Bolívar Pérez
Otros profesores: Antonio Astola González

Situación

Prerrequisitos

Tener conocimientos sobre
- Organización y estructura de las células procariotas y eucariotas.
Organización de los virus
- Conceptos básicos de química: concepto de pH y tamponamiento de
soluciones
acuosas, grupos químicos funcionales (p.e. hidroxilo, carboxilo, etc.)

Contexto dentro de la titulación

El Plan de Estudios desarrollado para la Licenciatura de Ciencias de
Ambientales en la Universidad de Cádiz ha sido diseñado para dotar al
Licenciado en Ciencias Ambientales de una formación interdisciplinar
que le
permita investigar, planificar y evaluar actividades de Gestión del
Medio
Natural. La formación adquirida por el alumno le capacita para
realizar
estudios de análisis, gestión e ingeniería ambiental en el ámbito de
las
empresas y administraciones públicas. Dicha formación requiere la
inclusión de
la asignatura BIOQUÍMICA, ya que los proceso bioquímicos juegan un
papel de
enorme importancia en el medio ambiente lo que hace que su
conocimiento sea
imprescindible para entender los procesos biogeoquímicos que tienen
lugar en
la naturaleza.

Recomendaciones

Durante el aprendizaje, se recomienda el trabajo  continuado con
objeto de
asimilar los conceptos que se impartan de forma progresiva,
participando
activamente de cuantas actividades se propongan en el transcurso de la
asignatura.

Competencias

Competencias transversales/genéricas

- Capacidad de análisis y síntesis.
- Conocimientos generales básicos.
- Solidez en los conocimientos básicos de la profesión.
- Resolución de problemas.
- Capacidad para aplicar la teoría a la práctica.
- Capacidad de aprender.

Competencias específicas

• Cognitivas(Saber):

  • Conocer los diferentes tipos de biomoléculas.
  • Saber las principales funciones de las principales biomoléculas
  • Conocer las principales rutas metabólicas de síntesis y obtención
  de energía
  

• Procedimentales/Instrumentales(Saber hacer):

  • Utilizar correctamente el instrumental básico de un laboratorio de
  bioquímca.
  • Utilización de los programas de acceso libre más comunes en
  bioinformática
  • Destreza en la resolución problema de cinética enizmática.
  • Cálculo de balances de materia y energía en las principales rutas
  metabólicas de síntesis y obtención de energía
  • Evaluación, interpretación y síntesis de datos e información
  analítica.
  

• Actitudinales:

  o Capacidad crítica sobre los logros obtenidos.
  o Mentalidad lógica dentro de los procesos estudiados.
  o Responsabilidad sobre el trabajo diario

Objetivos

Adquisición por parte del alumno de conocimientos en la estructura de las
biomoléculas más importantes y la relación con su actividad biológica, con
especial énfasis en el estudio de los ácidos nucleicos y proteínas. Del
primer
grupo de biomoléculas el alumno deberá conocer tanto su estructura como
los
acontecimientos moleculares implicados en la transmisión genética. En
cuanto a
las proteínas, deberá relacionar los distintos niveles de organización
estructural y la relación que existe entre estructura de una proteína y su
función. De entre las distintas funciones de las proteínas el alumno
deberá
comprender la importancia de los enzimas.  En cuanto a los lípidos, deberá
distinguir los distintos tipos, así como en la composición y estructura de
las
membranas biológicas y las bases moleculares de los procesos de
comunicación
celular y transducción de señal. Un segundo grupo de objetivos implica el
estudio del metabolismo intermediario, dedicado al conocimiento de las
vías
metabólicas generales y sus características de control, con el estudio
metabólico detallado de hidratos de carbono, lípidos, proteínas y
nucleótidos.
Estas vías metabólicas se relacionarán con los ciclos que siguen en las
biosfera los principales elementos químicos formadores de materia viva (C,
O,
N, S).

Programa

CLASES DE TEORÍA

I   INTRODUCCIÓN
TEMA 1. ARQUITECTURA MOLECULAR DE LA MATERIA VIVA.

II  BIOMOLÉCULAS
TEMA 2.  LAS PROTEÍNAS: ESTRUCTURA Y FUNCIÓN.
TEMA 3.  ÁCIDOS NUCLEICOS Y NUCLEOPROTEÍNAS. ESTRUCTURA. REPLICACIÓN Y
SÍNTESIS
DE PROTEÍNAS.
TEMA 4.  LÍPIDOS Y MEMBRANAS BIOLÓGICAS.
TEMA 5.  HIDRATOS DE CARBONO.

III ENZIMOLOGÍA
TEMA 6.  ENZIMAS Y CINÉTICA DE LA CATÁLISIS ENZIMÁTICA
TEMA 7.  NIVELES DE REGULACIÓN DE LA ACTIVIDAD ENZIMÁTICA.

IV METABOLISMO
TEMA 8.  INTRODUCCIÓN AL METABOLISMO.
TEMA 9.  LA GLUCOLISIS Y SUS PRODUCTOS.
TEMA 10. CICLO DE LOS ÁCIDOS TRICARBOXÍLICOS.
TEMA 11. FOSFORILACION OXIDATIVA.
TEMA 12. BIOSÍNTESIS DE HIDRATOS DE CARBONO.
TEMA 13. METABOLISMO DE LÍPIDOS.




CLASES PRÁCTICAS (1,5 CRÉDITOS)
1. RECONOCIMIENTO DE GLÚCIDOS: PODER REDUCTOR DE AZUCARES
2. ANÁLISIS BIOQUÍMICO DE LA LECHE
3. BIOINFORMÁTICA
4. RECONOCIMIENTO DE VITAMINAS /alternativamente TRANSFORMACIÓN DE
BACTERIAS
CON DNA PLASMÍDICO
5. CUANTIFICACIÓN DE PROTEÍNAS: METODO DE LOWRY

Metodología

Clases de teoría
Clases prácticas en laboratorio
Clases prácticas en aula de informática
CLASES TEÓRICAS: Lección magristral con presentaciones de power point
CLASES PRÁCTICAS
- Prácticas de laboratorio en aulas con capacidad para 25 alumnos
- Aula de informática con 25 ordenadores

Distribución de horas de trabajo del alumno/a

Nº de Horas (indicar total): 106,5

• Clases Teóricas: 22  
• Clases Prácticas: 10,5  
• Exposiciones y Seminarios:  
• Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales):
  • Colectivas:  
  • Individules:  
• Realización de Actividades Académicas Dirigidas:
  • Con presencia del profesorado: 4  
  • Sin presencia del profesorado: 4  
• Otro Trabajo Personal Autónomo:
  • Horas de estudio: 40  
  • Preparación de Trabajo Personal: 10  
  • ...
     
• Realización de Exámenes:
  • Examen escrito: 16  
  • Exámenes orales (control del Trabajo Personal):  

Técnicas Docentes

Actividades Académicamente Dirigidas: Resolución de
problemas de cinética enzimática y de balance de materia y
energía de rutas metabólicas

Criterios y Sistemas de Evaluación

En la evaluación de esta asignatura se tendrán en cuenta los contenidos
estudiados en las clases teóricas, en las sesiones de prácticas, en los
seminarios y en las clases de problemas, siendo la nota final proporcional
al
número de créditos asignados a cada uno de estos componentes didácticos.
Así,
sobre una nota de 10 puntos, 7 puntos corresponderán a la evaluación de
las
clases teóricas, 2 a las clases prácticas y 1 a las clases de problemas y
seminarios.

Recursos Bibliográficos

•  LEHNINGER, NELSON, COX.  Principios de Bioquímica. Ed. Mc Graw
Hill,
2000 (3a Edición)
•  STRYER. Bioquímica. Ed. Reverté, 2003 (5a Edición)
•  DEVLIN. Bioquímica: Libro de texto con aplicaciones clínicas. Ed
Reverté, 2004 (4ª Edición)
•  VOET, VOET. Bioquímica. Ed. Panamericana, 2007. (2a Edición)
•  MATHEWS VAN HOLDE. Bioquímica. Ed. Cummings, 2002 (3a Edición)