Recomendaciones

Haber superado las asignaturas de Microbiología, Bioquímica, Virología,
Inmunología, Genética,

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Charlas formativas en el aula

Desarrollo de procedimientos experimentales en el
laboratorio

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

El alumno debe superar la prueba teórica, que consistirá en
Tipo test, preguntas cortas y/o de desarrollo y/o problemas.
Las Practica y actividades de valorarán mediante la entrega de memoria, trabajos
y/o actividades.
Las prácticas son de asistencia obligatoria.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

Examen Teorico: 65%
Prácticas y actividades: 35%
Es necesario aprobar teoría y practicas para sumar ambas notas
Se valoraran Actividades académicamente dirigidas, tales como:
1 Lecturas obligadas de las que deben entregar un resumen
2 Trabajo bibliográfico de investigación
La calificación de prácticas y actividades académicas se guarda hasta las
convocatorias extraordinarias de junio y septiembre.

Descripcion de los Contenidos

            Genómica:
•  Contenidos teóricos
Tema 1.- Introducción y orígenes de la Genómica
Tema 2.- Tipos de genómicas: Genómica estructural y Genómica funcional
Tema 3.- Tecnologías en Genómica: Fundamentos Técnicos de la Genómica, Métodos de secuenciación, Chips de DNA y
Microarrays.
Tema 4.- Herramientas informáticas y de computación en Genómica: Análisis bioinformático de las secuencias.
Ensamblaje de novo. Ensamblaje sobre genomas de referencia. Anotación. Variantes genómicas. Creación de bases de
datos.
Tema 5.- Aplicaciones de la genómica. Genómica y Teorías Evolutivas. Genómica comparada. Metagenómica. Estructura
de los Genomas. Genómica y Medicina. Genómica y Agricultura.

•  Contenidos prácticos
Secuenciación de ADN. Mapeo de genes. Manejo y extracción de clones BACs, anotación y mapeo de genes a partir de
clones seleccionados de una genoteca BAC. Bioinformática

        

            Proteómica:

•  Contenidos teóricos:

Tema 1: Introducción.
Tema 2: Estrategias para la extracción de proteínas en análisis proteómicos
Tema 3: Estrategias para la separación de proteínas en análisis proteómicos
Tema 4: Estrategias para la identificación de proteínas en análisis proteómicos
Tema 5: Estrategias para la cuantificación de proteínas en análisis proteómicos
Tema 6: Proteómica de las modificaciones post-traduccionales.
Tema 7: Aplicaciones y perspectivas de futuro

•  Contenidos Prácticos:

Practica 1: Diseño experimental. Preparación de muestras y extracción de proteínas intracellulares y del secretoma
de Bacillus subtilis.
Practica 2: Tratamiento y separación de proteinas en 1D y 2D SDS-PAGE electroforesis.
Practica 3: Análisis y digestión de spots
Practica 4: Identificación de proteínas mediante MS/MS

        

            Transcriptómica y Manejo de datos:

•        Contenidos teóricos
Tema 1.- Transcriptómica. Transcriptoma: definición y concepto. Técnicas de análisis del transcriptoma:
plataformas. Usos y aplicaciones.
Tema 2. -Otras “omicas”. Exómica, Interactómica, definición y concepto.
Tema 3.- Predicción conformacional y funcional de proteínas.
Tema 4.- Principios de espectrometría de masas. Tipos de espectrómetros. Espectrometría de masas en tándem
Tema 5.- Herramientas para la identificación de proteínas por espectrometría de masas. Interpretación de espectros.
Tema 6.- Análisis cuantitativo de proteínas por espectrometría de masas. Marcaje químico (ICAT, iTRAQ, TMT,
dimetilación, O16-O18 , AQua). Marcaje metabólico (SILAC, SILAC dinámico). Cuantificación sin marcaje. Otros
métodos cuantitativos. Software para el análisis cuantitativo
Tema 7.- Análisis de modificaciones post-traduccionales por espectrometría de masas
Tema 8.- Glicómica. Importancia del análisis de glicanos. Análisis de glicanos por Espectrometría de masas y
cromatografía líquida.
Tema 9.- Introducción a la metabolómica. Herramientas de análisis. Importancia en biomedicina e industria.
Tema 10.-  Programas bioinformáticos  para el análisis e integración de de datos “biómicos”. Análisis de
interacciones moleculares.
Tema 11.- Aplicación de las herramientas proteómicas y espectrometría de masas en Biomedicina e industria (biofarma
y agroalimentación).

•        Contenidos practicos

Practica 1: La RT-qPCR: una técnica cuantitativa de aproximación al análisis del transcriptoma
Practica 2: Identificación de proteínas y análisis bioinformatico de datos proteómicos

        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica

Bibliografía Ampliación

Requisitos previos

Ninguno

Recomendaciones

Ninguna

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Tendrán un carácter expositivo, siendo su
objetivo fundamental la exposición de conceptos,
hipótesis y teorías científicas sobre el
contenido de la asignatura y la aplicación de
estos conceptos en la resolución de problemas.

Se dedicarán a la resolución de
problemas/supuestos prácticos utilizando los
conceptos adquiridos buscando una mayor
implicación del alumno.

Prácticas relacionadas con los contenidos de la
materia en el apartado de Biomarcadores,
diseñadas para que el alumno adquiera las
habilidades propias, constituyendo un complemento
y apoyo a las clases.

Prácticas relacionadas con los contenidos de la
materia en el apartado de Biosensores, diseñadas
para que el alumno adquiera las habilidades
propias, constituyendo un complemento y apoyo a
las clases y seminarios.

Estas actividades formativas incluyen:
- Tiempo individual de estudio de los conceptos
teóricos-prácticos de la asignatura: 45 horas
- Realización de actividades académicamente
dirigidas: 32 horas.
- Realización de los informes de prácticas de
Laboratorio y preparación previa de las sesiones,
incluyendo el tratamiento de los datos, su
interpretación y discusión de los resultados
finales: 5 horas.


El alumno dispondrá de tiempo suficiente para la
realización y entrega de dichas actividades,
pudiendo hacer uso de las tutorías con el fin de
resolver los problemas que pudieran surgir
durante la ejecución de las mismas.

- Pruebas de evaluación continua
- Examen final con cuestiones sobre los
contenidos teóricos y prácticos de la asignatura.

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

Apartado global de calificaciones:

1) Al ser una asignatura de segundo semestre, las calificaciones de la evaluación
continua se mantendrán durante las convocatorias de junio y septiembre del curso
académico en el que se obtengan dichas calificaciones, así como en la
convocatoria de febrero del curso siguiente.
2)Al ser una asignatura de segundo semestre, las calificaciones correspondientes
a los apartados incluidos en Teoría/Problemas se mantendrán durante las
convocatorias de junio y septiembre del curso académico en el que se obtengan
dichas calificaciones, así como en la convocatoria de febrero del curso
siguiente.
3)Las calificaciones correspondientes a los apartados incluidos en Prácticas se
mantendrán durante las convocatorias de junio y septiembre del curso académico en
el que se obtengan dichas calificaciones, así como en la convocatoria de febrero
del curso siguiente.
Se realizarán exámenes de Prácticas en las convocatorias de septiembre y febrero
para aquellos alumnos que no hayan superado la nota mínima exigida en el apartado
de Prácticas.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

El examen final de Teoría/Problemas de la asignatura contará un 60% de la nota
global. La nota mínima a alcanzar para hacer media con el resto de calificaciones
es de 4.
El 40% restante, correspondiente a la evaluación continua, se divide de la
siguiente manera:
1) Las prácticas de laboratorio contarán un 15% de la nota global, debiendo
obtenerse una nota mínima de 4 para superar este apartado y poder hacer media con
el resto de calificaciones.
2) Las prácticas de informática contarán igualmente un 15% de la nota global,
debiendo obtenerse una nota mínima de 4 para superar este apartado y poder hacer
media con el resto de calificaciones.
3) Los controles periódicos, actividades académicamente dirigidas y trabajos
contabilizarán el 10% restante.

Descripcion de los Contenidos

            Biomarcadores:

Teoría (26h presenciales):
-Introducción: Concepto, características y aplicaciones potenciales de los biomarcadores. Medicina personalizada (2
horas).
- Tecnologías “ómicas” y su aplicación a la búsqueda de biomarcadores: Genómica, Proteómica, Metabolómica y
otras (4 horas).
- Biomarcadores en enfermedades hereditarias (4 horas).
- Biomarcadores en oncología (4 horas).
- Biomarcadores en desórdenes neurológicos (Alzheimer, Parkinson, demencia) (2 horas).
- Biomarcadores en enfermedades cardiovasculares (2 horas).
- Biomarcadores y farmacogenómica (3 horas).
- Biomarcadores de infecciones (2 horas).
- Biomarcadores en diabetes y envejecimiento (2 horas).
- Aspectos éticos en el uso de biomarcadores (1 hora).

Prácticas en aulas de Informática:
Práctica 1 (2 horas): Trabajo práctico con herramientas bioinformáticas utilizadas en la búsqueda de biomarcadores.

Práctica 2 (2 horas): Búsqueda de información para el desarrollo de un biomarcador con un ejemplo.
        

            Biosensores (25 h)

1.-Generalidades
2.-Tipos de biosensores
3.-Inmovilización y modificación
4.-(Nano)materiales para la fabricación de biosensores
5.-Aplicaciones de biosensores
        

            Prácticas de laboratorio (5h)

Diseño y aplicación de biosensores
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Recomendaciones

Poseer conocimientos generales previos de Biología y Química General.

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Impartición de clases magistrales donde el
Profesor explica los fundamentos teóricos de la
materia. Se trata de proporcionar a los alumnos
los conocimientos básicos de la Bioquímica que le
permitan asimilar y desarrollar conceptos
fundamentales de la organización y comportamiento
a nivel molecular de los seres vivos. Llegar a
comprender la estructura y organización de la
materia viva en términos moleculares. Explicar de
qué forma interactúan los componentes de la
materia viva para dar lugar a estructuras
supramacromoleculares.

Actividades de resolución de problemas y
ejercicios enfocados a que el alumno complete el
aprendizaje  de los contenidos teóricos del
programa de la asignatura. Estarán dirigidas  a
una mayor participación activa del alumno en
clase, de modo que cada alumno tendrá que
resolver cuestiones o problemas delante de sus
compañeros y del profesor, sobre temas que
previamente se habrán explicado en las clases
teóricas y que anteriormente se habrán puesto a
disposición de los alumnos en el campus virtual.

Se desarrollarán en sesiones de trabajo por
grupos supervisadas por dos profesores. En dichas
sesiones se aplicarán de forma experimental los
conocimientos teóricos obtenidos en la
asignatura. Durante el tiempo final de cada
sesión se prestará especial atención a discutir
con cada alumno los resultados que ha obtenido, a
fin de ayudarle a elaborar la memoria de
précticas que deberá presentar a fin de curso.

Contemplan el trabajo realizado por el alumno
para comprender y profundizar en los contenidos
impartidos en las clases teóricas (50 horas).
También en la realización de los informes finales
de las prácticas de laboratorio(14 horas) así
como en la resolución de ejercicios y problemas
de forma autónoma, que el profesor le propondrá a
lo largo del curso (12 horas)

Se establecerá una relación personalizada de
ayuda entre el profesor y uno o más alumnos con
el objeto de resolver dudas y orientar en la
formación. Podrán ser presenciales o virtuales.

Contemplan el tiempo que el alumno dedicará a la
realización de los exámenes que se realizarán en
relación con la asignatura.

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

Se valorará la adecuación y claridad de las respuestas a las cuestiones
planteadas en los exámenes. La corrección y razonamientos a la hora de la
resolución de ejercicios ante los alumnos. Asimismo se considerará la asistencia
a las prácticas, el rigor experimental en el laboratorio y la claridad y
coherencia en la elaboración de la Memoria de las Prácticas de Laboratorio.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

Se calificará sobre 10 puntos el total de la asignatura. La distribución ponderal
será: 7 puntos para la prueba final escrita y 3 puntos para las Prácticas de
Laboratorio. En éste último apartado se valorará con 2 puntos tanto la asistencia
a las clases prácticas como la calidad de presentación y el contenido de la
Memoria.  El otro punto se obtendrá con un examen práctico. A esta nota se le
sumará la puntuación de los controles.

Descripcion de los Contenidos

            Tema 01. Introducción a la Bioquímica.
        

            Tema 02. Biomoléculas. El agua: el medio de la vida
        

            Tema 03. Introducción a las proteínas. Nivel primario de las estructura de las proteínas: los aminoácidos.
        

            Tema 04. Estructura tridimensional de las proteínas.
        

            Tema 05. Clasificación y características funcionales de las proteínas.
        

            Tema 06. Métodos generales para el estudio de las proteínas.
        

            Tema 07. Hidratos de carbono.
        

            Tema 08. Lípidos y lipoproteínas.
        

            Tema 09. Acidos nucleicos.
        

            Tema 10. Fundamentos de la biosíntesis de ácidos nucleicos y proteínas.
        

            Tema 11. Generalidades de enzimas. Cinética enzimática.
        

            Tema 12. Inhibición enzimática.
        

            Tema 13. Mecanismos de acción de los enzimas.
        

            Tema 14. Regulación de la actividad de los enzimas.
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica

Bibliografía Ampliación

Requisitos previos

Ninguno

Recomendaciones

Haber superado previamente las asignaturas Bioquímica (1º-1º semestre) y
Metabolismo y su Regulación (1º-2º semestre).

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Esta actividad consta de 30 sesiones de una hora
de duración en las que se impartirán clases
magistrales durante las cuales el profesor
explicará los fundamentos teóricos de la materia
y se realizará un seguimiento de la adquisición
de conocimientos por parte de los alumnos

Consiste en 3 sesiones de aproximadamente tres
horas de duración. En ellas los alumnos expondrán
los Posters realizados acerca de un conjunto de
vías de señalización celular propuestas por el
profesor y asignadas a grupos de 4-5 alumnos.

Se realizarán 5 sesiones de 4 horas de duración
de prácticas de laboratorio supervisadas por el
profesor. Se realizará una única práctica
distribuida en las 5 sesiones mencionadas.
El protocolo completo de la práctica será
explicado a los alumnos el primer día. Para la
óptima realización de la actividad será necesario
que cada grupo de prácticas realice las 5
sesiones de manera consecutiva a lo largo de una
única semana/grupo. Con el fin de evaluar los
resultados del aprendizaje los alumnos
presentarán una memoria final.

Estudio de la información adquirida en las clases
magistrales. Profundización en estos
conocimientos con la ayuda de la bibliografía y
de páginas web recomendadas por el
profesor.Búsqueda y análisis de información para
preparación de seminarios. Elaboración de la
memoria de prácticas.

En las tutorías se resolverán dudas y se
orientará de forma individualizada en lo relativo
a los conocimientos teóricos, resolución de
problemas y/o elaboración de la memoria de
prácticas. Estas tutorías se realizarán a
petición del alumno y podrán desarrollarse de
forma presencial o a través del aula virtual o
del correo electrónico.

El alumno realizará una prueba en la que
demostrará los conocimientos teóricos y prácticos
adquiridos.

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

Se valorará la adecuación y claridad de las respuestas a las cuestiones
planteadas en las pruebas escritas. Asimismo se valorará la calidad y caracter de
difusión del workshop sobre vías de señalización.Igualmente se evaluará la
participación en las actividades académicamente dirigidas. Por último la
coherencia en la interpretración de los resultados obtenidos en las clases
prácticas y su plasmación en un examen de prácticas.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

La calificación final obtenida se obtendrá de acuerdo con la siguiente
proporción:
Prueba escrita sobre contenidos teóricos (constaran de test realizados a lo largo
del curso (20% de la nota global con caracter voluntario) y un examen final (40%
de la nota global con caracter obligatorio): Total 60%
Prácticas de laboratorio (caracter obligatorio en primera matrícula): 20%
Actividades académicamente dirigidas (caracter voluntario): 5%
La preparación y realización de un Poster (caracter voluntario): 15%.
Para aprobar la asignatura:
debe obtenerse una calificación de al menos 4,5 sobre 10 en el examen final
de 4,5 sobre 10 en la evaluación de las prácticas de laboratorio.
La nota media se determinará de la siguiente forma:
n.m.= (media de los test)*0.20+(nota examen teórico)*0,40+(nota
prácticas)*0,20+(nota workshop)*0.15+(nota actividades)*0.05
Los alumnos en segunda y sucesivas matrículas conservarán todas las notas del
curso realizado en primera matrícula excepto la del examen final (40% de la
nota). En caso de no disponer de ellas (no haber cursado la asignatura pese a
estar matriculado) la evaluación de la asignatura seguirá el estandar de un
alumno de primera matrícula. No obstante el alumno en segunda y sucesivas
matrículas podrá elegir entre cualquiera de las dos modalidades de evaluación.

Descripcion de los Contenidos

            TEMA 01. INTRODUCCIÓN AL TRANSPORTE Y SEÑALIZACIÓN CELULAR:
1. Transporte y Señalización Celular, organización de la asignatura.
        

            TEMA 02: ESTRUCTURA DE LA MEMBRANA PLASMÁTICA.
1. Introducción
2. Biomembranas: composición lipídica y organización estructural
3. Biomembranas: componentes proteicos y funciones básicas

        

            TEMA 03: TRANSPORTE DE IONES Y MOLÉCULAS PEQUEÑAS
1. Introducción
2. Bombas impulsadas por ATP, ambiente iónico intracelular
3. Canales iónicos no regulados y potencial de membrana en reposo
4. Co-transporte mediante simportadores y antiportadores.
5. Movimientos del agua.
6. Ejemplos de integración del trasporte a través de membrana.

        

            TEMA 04: TRANSPORTE DE MACROMOLÉCULAS A TRAVÉS DE  LAS MEMBRANAS CELULARES.
1. Introducción
2. Vías endocíticas
3. Vías exocíticas
4. Transporte vesicular

        

            TEMA 05: TRANSPORTE EN EL INTERIOR CELULAR.
1. Introducción
2. Los códigos señal dirigen las proteínas hacia el compartimento correcto.
3. Mecanismo de transporte a través de los poros nucleares
4. Mecanismo de transporte a orgánulos de membrana
5. Mecanismo de transporte al RE y aparato de Golgi
6. Movimientos intramoleculares: proteínas motoras.

        

            TEMA 06. INTRODUCCIÓN A LA SEÑALIZACIÓN CELULAR.
1. Concepto de transducción de señales.
2. Introducción a los estímulos y repuestas celulares.
        

            TEMA 07: TIPOS DE SEÑALES CELULARES
1. Introducción
2. Señalización intercelular
3. Moléculas transportadoras de la señal: hormonas y neurotransmisores.
4. Señalización celular mediante uniones tipo gap.
5. Señalización celular mediante interacciones célula-célula vía proteínas de superficie.

        

            TEMA 08: RECEPTORES CELULARES
1. Introducción
2. Clasificación de receptores.
3. Receptores transmembrana.
4. Receptores nucleares/citosólicos.

        

            TEMA 09: VÍAS DE SEÑALIZACIÓN QUE UTILIZAN RECEPTORES ASOCIADOS A PROTEÍNAS G (GPCRs).
1. Introducción
2. Receptores GPCRs
3. Familia de las GTPasas reguladoras: Proteínas G
4. Principales moléculas efectoras de las Proteínas G.

        

            TEMA 10: VÍAS DE SEÑALIZACIÓN QUE UTILIZAN RECEPTORES CON ACTIVIDAD ENZIMÁTICA.
1. Introducción
2. Vías que utilizan receptores con actividad enzimática intrínseca
3. Vías que utilizan receptores con actividad enzimática asociada.

        

            TEMA 11: VÍAS QUE UTILIZAN RECEPTORES QUE SON  CANALES IÓNICOS
1. Introducción
2. Tipos de receptores que son canales iónicos.
3. Transmisión del impulso nervioso.

        

            TEMA 12: VÍAS EN LAS QUE SE DESARROLLA ACTIVIDAD PROTEOLÍTICA
1. Introducción
2. Vía de señalización NF-kB
3. Vía de señalización Notch/Delta.
4. Vía de señalización Hedgehog.
5. Vía de señalización Wnt.

        

            TEMA 13: VÍAS DE LOS RECEPTORES NUCLEARES/CITOSÓLICOS
1. Introducción
2. Principios de la señalización por Receptores Nucleares/Citosólicos (RNC).
3. Mecanismos de regulación transcripcional mediados por RNC.
4. Principales vías de señalización mediadas por RNC.

        

            TEMA 14. MUERTE CELULAR PROGRAMADA: APOPTOSIS.
1. Papel de la cascada de caspasas en el proceso apoptótico.
2. Apoptosis vía mitocondrial.
3. Apoptosis vía receptores de muerte celular.
        

            TEMA 15. SEÑALIZACIÓN CELULAR Y CANCER.
1. Células tumorales e inicio del cáncer.
2. Bases genéticas del cáncer.
3. Aberraciones en vías de señalización del ciclo celular que pueden provocar cáncer.
        

            TEMA 16: SEÑALIZACIÓN CELULAR  Y CONTROL DEL CICLO CELULAR.
1. Introducción al ciclo celular.
2. Controles del ciclo celular (checkpoints)
3. Control de daños.
        

            X PRÁCTICAS DE LABORATORIO: Detección y semi-cuantificación de señalizadores hormonales mediante la técnica del
western transfer.
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica

Bibliografía Ampliación

Requisitos previos

Los generales contemplados en la Memoria del Grado

Recomendaciones

Haber cursado las asignaturas Genética, Genética Molecular y Mejora Genética

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

La adquisición de competencias se valorará a través de diversas actividades de
evaluación tal y como se recoge en el apartado 5.3 de la Memoria del Grado.

- Se valorará la capacidad de integración de la información recibida, la
coherencia en los argumentos, la claridad, la corrección y la concreción en las
respuestas a las cuestiones planteadas sobre el contenido teórico-práctico de la
asignatura.

- La asistencia a prácticas será obligatoria.

- En las pruebas de evaluación realizadas por el alumno se valorará la
adecuación, claridad, coherencia, justificación y precisión en las respuestas.

- Las notas obtenidas en las prácticas  se guardarán para las convocatorias de
Septiembre y Febrero.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

Pruebas escritas u orales de acreditación de contenidos de la asignatura.

- Actividades y cuestionarios de prácticas. Las prácticas de laboratorio son de
asistencia obligatoria y existirá un control sistemático de asistencia a las
mismas. La asistencia a prácticas es una condición necesaria para poder
presentarse al examen y aprobar la asignatura.
Las actividades (10 %) y prácticas (15 %) se valorarán con el 25 % del total de
la nota de la asignatura. El examen teórico valdrá el 75 % restante.
Para sumar ambas calificaciones se necesita tener aprobadas (al menos un cinco)
en cada una de ellas.

Descripcion de los Contenidos

            TEMARIO TEORIA

Tema 1. Modelos de reproducción. Bases de la reproducción sexual: Meiosis. La línea germinal.

Tema 2. Gametogénesis: Oogénesis. Endocrinología de la función reproductiva de la hembra. Concepto de ciclo
reproductivo. Fase folicular. Fase luteal. Modelos básicos de ciclo en mamíferos. Bases genéticas de la oogénesis.

Tema 3. Gametogénesis: Espermatogénesis. Endocrinología de la función reproductiva del macho. Control hormonal de
la espermatogénesis. Transporte espermático y capacitación celular. Bases genéticas de la espermatogénesis.

Tema 4. Fecundación. Etapas de la fecundación. Reconocimiento óvulo-espermatozoide. Control de la polispermia: la
reacción cortical. Activación del metabolismo y reinicio de la división celular. Bases genéticas de la
fecundación. Obtención de ginogenéticos, androgenéticos y poliploides.

Tema 5. Desarrollo embrionario. Desarrollo temprano en mamíferos. Segmentación. Blastocisto: linajes celulares
básicos. Células madre. Gastrulación. Transporte del embrión e implantación. Organogénesis. Bases genéticas del
desarrollo embrionario. Deficiencias del desarrollo embrionario.

Tema 6. Técnicas de Reproducción Asistida

Tema 7. Fecundación in vitro. Descripción de técnica y etapas
ICSI. Inyección Intracitoplasmástica de Espermatozoides

Tema 8. Cultivo embrionario y Mejora de la calidad embrionaria por manipulación de embriones

Tema 9. Transferencia embrionaria. Implantación. Fallo de Implantación

Tema 10. Manipulación y crioconservación de gametos y embriones in vitro

Tema 11. Descripción del cariotipo en humanos y de las anomalías cromosómicas. Metodologías de detección de
anomalías genéticas (citogenéticas y moleculares).

Tema 12. Genética clínica: Aneuploidías autosomales. Reorganizaciones cromosómicas. Anomalías en cromosomas
sexuales. Genética de la infertilidad en hembras y machos.

Tema 13. Diagnostico prenatal. Técnicas de diagnóstico, análisis del cariotipo fetal y determinación de desórdenes
cromosómicos o síndromes genéticos.

Tema 14. Selección embrionaria mediante diagnóstico genético preimplantacional. Técnicas de diagnóstico.
Requisitos y objetivos para realizar el diagnóstico genético preimplantacional. Legislación.

Tema 15. Definición del consejo genético. Componentes de las sesiones y función del asesoramiento genético.
Indicaciones citogenéticas para el consejo genético: historial familiar, sospecha clínica de síndromes genéticos o
anomalías cromosómicas.

TEMARIO PRÁCTICAS

Prácticas de laboratorio.
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica

Bibliografía Ampliación

Recomendaciones

Se recomienda haber superado las siguientes materias: Bioquímica, Biología,
Virología e Inmunología, Bases Moleculares del Metabolismo y la Expresión Génica.

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Esta actividad consta de 30 sesiones de
una hora de duración en las que se
impartirán clases magistrales durante
las cuales el profesor explicará los
fundamentos teóricos de la materia y se
realizará un seguimiento de la
adquisición de conocimientos por parte
de los alumnos.

Preparación y exposición por parte del alumnado
de un tema relacionado con el temario y propuesto
por el profesorado.

Se realizarán 5 sesiones de 4 horas de
duración de prácticas de laboratorio
supervisadas por el profesor. Durante
la última hora de cada sesión se
discutirán los resultados obtenidos
para facilitarle la elaboración de la
memoria de prácticas que deberá
presentar tras la finalización de esta
actividad.

Estudio de la información adquirida en
las clases magistrales. Profundización
en estos conocimientos con la ayuda de
la bibliografía y de páginas web
recomendadas por el profesor. Búsqueda
y análisis de información para
preparación de seminarios. Elaboración
de la memoria de prácticas.

En las tutorías se resolverán dudas y se
orientará de forma individualizada en
lo relativo a los conocimientos
teóricos, resolución de problemas y/o
elaboración de la memoria de prácticas.
Estas tutorías se realizarán a petición
del alumno y podrán desarrollarse de
forma presencial o a través del aula
virtual o del correo electrónico.

El alumno realizará una prueba en la que
demostrará los conocimientos teóricos y
prácticos adquiridos.

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

Se valorará la adecuación y claridad de las respuestas a las cuestiones
planteadas en las pruebas escritas. Asimismo se valorará la exposición oral y
capacidad de síntesis en los seminarios y la coherencia en la interpretración de
los resultados obtenidos en las clases prácticas y su plasmación en la memoria de
prácticas.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

La calificación final obtenida se obtendrá de acuerdo con la siguiente
proporción:
Prueba final escrita sobre sobre contenidos teóricos: 40%
Pruebas parciales sobre contenidos teóricos 30%
Prácticas de laboratorio: 20%
Preparación y exposición de un seminario: 10%
Para aprobar la asignatura debe obtenerse una calificación de al menos 4 sobre 10
tanto en el examen final como en la evaluación de las prácticas de laboratorio.
La nota de prácticas obtenida en la convocatoria de febrero se conservará enlas
convocatorias de junio y septiembre.

Descripcion de los Contenidos

            Tema 01. ASPECTOS GENERALES SOBRE LOS CULTIVOS CELULARES.
Historia de los cultivos celulares. Ventajas y desventajas de los cultivos celulares. Aplicaciones en investigación,
clínica e industria.

        

            Tema 02. BIOLOGÍA DE LAS CÉLULAS ANIMALES “IN VITRO”.
Estructura de la célula animal. Adhesión celular, citoesqueleto, metabolismo energético, factores de crecimiento.
Diferenciación/desdiferenciación. Proliferación. Estabilidad genética.

        

            Tema 03. DISEÑO Y EQUIPAMIENTO DEL LABORATORIO DE CULTIVOS CELULARES.
Equipamiento y uso de material. Área de trabajo estéril. Cabina de flujo laminar. Incubadores de células.
Mantenimiento y normas básicas de seguridad e higiene.

        

            Tema 04. REQUERIMIENTOS Y CARACTERIZACIÓN DE CULTIVOS CELULARES “IN VITRO”.
Requerimientos físico-químicos: temperatura, osmoralidad y pH.Medios de cultivo: características, composición y
tipos.

        

            Tema 05. ESTERILIZACIÓN Y CONTAMINACIÓN
Preparación del equipamiento. Preparación y esterilización de reactivos, medios y suplementos. Contaminación:
fuentes de contaminación. Contaminación cruzada. Controles rutinarios.

        

            Tema 06. PARAMETROS DE CRECIMIENTO DE LOS CULTIVOS CELULARES.
Recuento. Viabilidad. Mantenimiento. Criopreservación. Crecimiento en adherencia y en suspensión. Tiempo de doblaje y
curva de crecimiento

        

            Tema 07. CULTIVOS PRIMARIOS
Concepto de cultivo primario versus línea celular. Disgregación mecánica de los tejidos animales. Enzimas utilizados
en la obtención de cultivos primarios. Aislamiento de los distintos tipos celulares.

        

            Tema 08. LÍNEAS CELULARES.
Estrategias de obtención de líneas celulares. Diferenciación y transformación de líneas celulares. Subcultivos:
Master Cell Bank, Working Cell Bank.

        

            Tema 09. TÉCNICAS INSTRUMENTALES Y MÉTODOS DE ANÁLISIS EN LOS CULTIVOS CELULARES.
Microscopía óptica. Microscopía de fluorescencia y confocal. Microscopía electrónica. Citometría de flujo y Cell
Sorter. Otras técnicas de selección de tipos celulares. Análisis del contenido de ADN y proteínas.

        

            Tema 10.  APLICACIONES DE LOS CULTIVOS CELULARES EN INVESTIGACIÓN.
Localización subcelular de moléculas: inmunofluorescencia indirecta, FISH y expresión de proteínas de fusión
(fusión a proteínas fluorescentes y a secuencas “tag”). Análisis de la función génica: sobreexpresión mediante
transfección transitoria ó estable. Falta de función: interferencia del RNAi, eliminación de la función mediante
KO (TALEN). Ensayos de invasión y migración.

        

            Tema 11. APLICACIONES CLÍNICAS DE LOS CULTIVOS CELULARES. CÉLULAS MADRE.
Evaluación de citotoxicidad y muerte celular de nuevos medicamentos.
Terapia génica. Células madre y medicina regenerativa. Cultivo de células troncales embrionarias y adultas. Cultivo
de células troncales de cordón umbilical. Células madre pluripotentes inducidas o células iPS (de induced
pluripotent stem cells)

        

            Tema 12. APLICACIONES INDUSTRIALES.
Producción de anticuerpos monoclonales. Dianas moleculares y sistemas de cribado. Obtención y caracterización de los
anticuerpos monoclonales. Producción de vacunas. Producción de proteínas a gran escala. Legislación relacionada con
los cultivos celulares. Recursos en internet. Entidades y Empresas.

        

            X Prácticas de laboratorio
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Recomendaciones

Haber cursado Biología y Biología Animal y Vegetal.

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Exposición verbal de los contenidos teóricos
mediante clase magistral. Los contenidos y
materiales de apoyo estarán a disposición de los
alumnos en el Campus virtual.

Se explicarán problemas de Genética relacionados
con los contenidos de la Asignatura. Se
propondrán a los alumnos la realización de
problemas similares a los explicados en clase. Se
expondrán seminarios sobre temas y aspectos de
refuerzo a los contenidos de la asignatura.

Prácticas de laboratorio en grupo en el que el
profesor va guiando al alumno durante los pasos
que se tienen que llevar a cabo en los diferentes
protocolos. El objetivo es que el alumno,
orientado por el profesor, sea capaz de realizar
adecuadamente prácticas de laboratorio de
Genética a partir de protocolos descritos y
alcance los objetivos deseados.

El alumno llevará a cabo el estudio de las
contenidos teóricos y asimilación de las técnicas
utilizadas en las clases prácticas. Preparará de
forma individual la resolución de cuestiones,
trabajos y memorias.

El alumno contará con la ayuda del profesor para
cualquier duda, problema o apoyo en la búsqueda
de recursos e información.

Tiempo que el alumno dedicará a la preparación y
realización del examen.

Cualquier otra actividad a la que el alumno
dedique tiempo para completar su aprendizaje de
cara a la evaluación de la asignatura y su propia
formación en la misma.

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

- La adquisición de competencias se valorará a través de diversas actividades de
evaluación tal y como se recoge en el apartado 5.3 de la Memoria del Grado.

- Se valorará la capacidad de integración de la información recibida, la
coherencia en los argumentos, la claridad, la corrección y la concreción en las
respuestas a las cuestiones planteadas sobre el contenido teórico-práctico de la
asignatura.

- La asistencia a prácticas será obligatoria.

- En las pruebas de evaluación realizadas por el alumno (exámenes) se valorará la
adecuación, claridad, coherencia, justificación y precisión en las respuestas.

- Las notas obtenidas en las prácticas  se guardarán para las convocatorias de
Septiembre y Febrero.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

-  Pruebas escritas u orales de acreditación de contenidos de la asignatura.

- Actividades y Memoria de prácticas. Las prácticas de laboratorio son de
asistencia obligatoria y existirá un control sistemático de asistencia a las
mismas. La asistencia a prácticas es una condición necesaria para poder
presentarse al examen y aprobar la asignatura.
Las actividades y prácticas se valorarán con el 25 % del total de la nota de la
asignatura.
El examen teórico valdrá el 75 % restante.
Para sumar ambas calificaciones se necesita tener aprobadas (al menos un cinco)
en cada una de ellas

Descripcion de los Contenidos

            Tema 1: Naturaleza, estructura, organización, función y transmisión del material hereditario.
        

            Tema 2: Replicación. Modelo semiconservativo. Síntesis de DNA.
        

            Tema 3: Mendelismo. Genes autosómicos. Dominancia completa. Dominancia incompleta. Genes aditivos. Retrocruzamiento y
cruzamiento prueba. Herencia dihíbrida.
        

            Tema 4: Recombinación. Ligamiento. Análisis del ligamiento. Planteamiento directo. Cruzamiento prueba. F2.
Planteamiento inverso. Cruzamiento prueba. Prueba de la existencia de
ligamiento. Estimación de la fracción de recombinación.
        

            Tema 5: Mutación. Base molecular de la mutación. Mutaciones cromosómicas y evolución.
        

            Tema 6: Mutágenos. Mutaciones espontáneas. Descripción, Sistemas y Mecanismos de reparación.
        

            Tema 7: Genética cuantitativa. Base mendeliana de la variación contínua. Teoría de las líneas puras. Teoría de
los factores polímeros. Variante fenotípica y su partición. Heredabilidad. Varianza de la interacción
genotipo-ambiente. Varianza ambiental.
        

            Tema 8: Genética de poblaciones. Marcadores genéticos. Frecuencias génicas y genotípicas.
Variabilidad genética. Equilibrio Hardy-Weinberg.
        

            Tema 9: Especiación y evolución. Concepto de especie. Evolución Darwiniana. Teoría sisntética
de la evolución. Proceso de especiacion. Evolución molecular. Filogenia molecular.
        

            Temas contenidos Prácticas: Obtención de cariotipos y bandeo cromosómico.  Observación y
cálculo de la recombinación.
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica

Recomendaciones

Aprobar los contenidos de la materia Bioquímica y la asignatura de Genética

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Exposición verbal de los contenidos teóricos
mediante clase magistral. Los contenidos y
materiales de apoyo estarán a disposición de los
alumnos en el Campus virtual.

Prácticas de laboratorio en grupo en el que el
profesor va guiando al alumno durante los pasos
que se tienen que llevar a cabo en los diferentes
protocolos. El objetivo es que el alumno,
orientado por el profesor, sea capaz de realizar
adecuadamente prácticas de laboratorio de
Genética a partir de protocolos descritos y
alcance los objetivos deseados.

El alumno llevará a cabo el estudio de las
contenidos teóricos y asimilación de las técnicas
utilizadas en las clases prácticas. Preparará de
forma individual la resolución de cuestiones,
trabajos y memorias.

El alumno contará con la ayuda del profesor para
cualquier duda, problema o apoyo en la búsqueda
de recursos e información.

Tiempo que el alumno dedicará a la preparación y
realización del examen.

Cualquier otra actividad a la que el alumno
dedique tiempo para completar su aprendizaje de
cara a la evaluación de la asignatura y su propia
formación en la misma.

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

-- La adquisición de competencias se valorará a través de diversas actividades de
evaluación tal y como se recoge en el apartado 5.3 de la Memoria del Grado.

- Se valorará la capacidad de integración de la información recibida, la
coherencia en los argumentos, la claridad, la corrección y la concreción en las
respuestas a las cuestiones planteadas sobre el contenido teórico-práctico de la
asignatura.

- La asistencia a prácticas será obligatoria.

- En las pruebas de evaluación realizadas por el alumno se valorará la
adecuación, claridad, coherencia, justificación y precisión en las respuestas.

- Las notas obtenidas en las prácticas  se guardarán para las convocatorias de
Septiembre y Febrero.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

-  Pruebas escritas u orales de acreditación de contenidos de la asignatura.

- Actividades y Memoria de prácticas. Las prácticas de laboratorio son de
asistencia obligatoria y existirá un control sistemático de asistencia a las
mismas. La asistencia a prácticas es una condición necesaria para poder
presentarse al examen y aprobar la asignatura.
Las actividades y prácticas se valorarán con el 25 % del total de la nota de la
asignatura. El examen teórico valdrá el 75 % restante.
Para sumar ambas calificaciones se necesita tener aprobadas (al menos un cinco)
en cada una de ellas.

Descripcion de los Contenidos

            TEORIA

1. Bases de flujo de la información genética. Estructura de los genes, tamaño y complejidad de los genomas.
Mitocondrias y cloroplastos

2. Transcripción. Promotores y maquinaria general de transcripcion. Regulación en bacterias: el operón. Traducción

3. Procesamiento y regulación de la transcripción. Atenuación. Edición

4. Regulación postranscripcional. RNA de interferencia

5. Cromatina y regulación. Epigenética

6. Recombinación a nivel molecular

7. Regulación por número de copias. Regulación por reordenación del DNA.

8. Control genético  del desarrollo

9. Ejemplos concretos de sistemas de regulación coordinada de genes.

PRACTICAS

Clases de problemas
Prácticas de laboratorio.
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica

Bibliografía Ampliación

Requisitos previos

No hay

Recomendaciones

Se recomienda haber cursado Biología, Bioquímica y Metabolismo y su regulación.

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Clase magistral
Resolución de problemas
Participación espontánea del alumno en las clases

Se realizará un seminario de 5 horas en el que se
utilizarán bases de datos de interés científico
general y en el ámbito de la Inmunología. Además
en este seminario se introducirán conceptos
esenciales para la compresnsión de técnicas de
citometría de flujo, ELISA y bioplex.
En el examen se evaluarán las capacidades
adquiridas en este seminario.
Los alumnos repetidores con evaluación favorable
de los seminarios y prácticas del año anterior no
tendrán que realizarlos de nuevo.

1. Aislamiento y cultivo de células mononucleares
de ratón.
2. Citometría de flujo.
3. ELISA/MULTIPLEX.

Tutorías no presenciales: el alumno podrá
contactar con los profesores de la asignatura
para resolver dudas.
Acceso al material docente disponible para los
alumnos.
Acceso a cuestiones y problemas a resolver y a
cuestiones resueltas
Preparación de materiales y estudio de la
asignatura.

Tutorías presenciales o virtuales en función de
las necesidades del alumno y a realizar en el
horario disponible de los profesor es de la
asignatura.

Entrega de los seguimientos propuestos por los
profesores.
Elaboración de preguntas de respuesta múltiple
por parte de los alumnos como método para una
mejor comprensión de los contenidos, con
posibilidad de entrar en el examen.
Presentación oral voluntaria de un trabajo de
investigación científica en inmunología.

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

La adquisición de competencias se valorará a través de una prueba global, donde,
además de las cognitivas, se evalúan de forma particular las competencias CG7,
CE5 y CB5 con cuestiones sobre los contenidos y/o a través de evaluación
continua. La evaluación continua, se realizará a partir del trabajo desarrollado
a lo largo del curso incluyendo resolución de problemas, seguimientos propuestos
para distintos temas y la elaboración de preguntas multirespuesta por parte de
los alumnos a través del campus virtual.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

Se realizará una evaluación continua a través de las diversas actividades
mencionadas y una prueba global.
La nota final será el resultado de considerar cinco apartados:
1) Prueba final de carácter global: 75% de la nota final.
La prueba global constará de varias cuestiones o problemas y 40 preguntas de
respuesta múltiple. Las cuestiones tendrán un peso del 25% de la prueba final, y
las preguntas de respuesta múltiple un 75% de la prueba final.
2) Seguimiento Diario: 10% de la nota final
3) Exposición de trabajos científicos: 15% de la nota final.

Descripcion de los Contenidos

            01 Células, Órganos y Tejidos del Sistema Inmune
        

            02 Inmunidad innata
        

            03 Anatomía funcional de los órganos linfoides.
        

            04 Generación de la diversidad de los receptores de antígeno

        

            05 Receptores de antígeno y moléculas accesorias
        

            06 Desarrollo de las células del sistema inmunitario
        

            07 Reconocimiento y presentación de antígeno. Interacción antígeno/anticuerpo. MHC.

        

            08 Tolerancia inmunológica
        

            09 Mecanismos Efectores Mediados por Células o Anticuerpos. Citoquinas.
        

            10 Inmunidad frente a los microorganismos. Vacunación.

        

            11 Inmunidad frente a tumores. Terapias avanzadas.
        

            12 Reacciones de Hipersensibilidad.
        

            13 Inmunodeficiencias y Autoinmunidad.
        

            14 Trasplante.
        

            Prácticas
        

            Presentación oral trabajos investigación.
        

            Seminario de citometría de flujo, bioplex y bioinformática inmunológica.
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica

Bibliografía Ampliación

Requisitos previos

No hay

Recomendaciones

Se recomienda haber cursado Inmunología, Virología, así como las asignaturas del
módulo de BASES MOLECULARES DEL METABOLISMO Y LA EXPRESIÓN GÉNICA (Metabolismo y
su regulación, Bioquímica Dinámica, Genética Molecular y Laboratorio Integrado de
Biología Molecular e Ingeniería Genética).

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Clase magistral.
Resolución de problemas.
Participación espontánea del alumno en las
clases.

Se realizará un seminario de 5 horas en el que se
utilizará software específico y bases de datos
"on line" para la obtención de las secuencias de
los segmentos variables de anticuerpos de interés
en terapias avanzadas.
En el examen se evaluarán las capacidades
adquiridas en este seminario. Los alumnos
repetidores con evaluación favorable de los
seminarios y prácticas del año anterior no
tendrán que realizarlos de nuevo.

1. Introducción a la producción de anticuerpos
monoclonales: preparación de antígenos,
inmunización, fusión, manejo hibridomas.
2. Transfección "in vitro" de células primarias
de tejidos linfoides con vectores lentivirales:
obtención, cultivo y activación celular, cultivo
y transfección de células empaquetadoras,
obtención de sobrenadantes.
3. Tipaje HLA como paso previo a transplante de
órganos. Tipaje serológico. Tipaje molecular por
SSP.
4. Micromanipulación y criopreservación de
embriones (visita a los Servicios Centrales de
Investigación de Biomedicina y Ciencias de la
Salud).

Tutorías no presenciales: el alumno podrá
contactar con los profesores de la asignatura
para resolver dudas. Acceso al material docente
disponible para los alumnos. Acceso a cuestiones
y problemas a resolver y a cuestiones resueltas.
Preparación de materiales y estudio de la
asignatura.

Tutorías presenciales o virtuales en función de
las necesidades del alumno y a realizar en el
horario disponible de los profesor es de la
asignatura.

Entrega de los seguimientos propuestos por los
profesores.
Elaboración de preguntas de respuesta múltiple
por parte de los alumnos como método para una
mejor comprensión de los contenidos, con
posibilidad de entrar en el examen.
Presentación oral voluntaria de un trabajo de
investigación científica en el campo de la
inmunoterapia.

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

La adquisición de competencias se valorará a través de una prueba global, donde,
además de las cognitivas, se evalúan de forma particular las competencias CA7,
CG4, CG6 y CG7, con cuestiones sobre los contenidos y/o a través de evaluación
continua. La evaluación continua, se realizará a partir del trabajo desarrollado
a lo largo del curso incluyendo resolución de problemas, seguimientos propuestos
para distintos temas y la elaboración de preguntas multirespuesta por parte de
los alumnos a través del campus virtual.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

Se realizará una evaluación continua a través de las diversas actividades
mencionadas y una prueba global.
La nota final será el resultado de considerar cinco apartados:
1) Prueba final de carácter global: 75% de la nota final.
La prueba global constará de varias cuestiones o problemas y/o  preguntas de
respuesta múltiple.
2) Seguimiento Diario: 10% de la nota final
3) Exposición de trabajos científicos: 15% de la nota final.

Descripcion de los Contenidos

            01. Conceptos básicos e introducción a la terapia génica.

        

            02. Moléculas de uso terapéutico: transgenes terapéuticos, anticuerpos recombinantes y moléculas inhibidoras de la
expresión génica.
        

            03. Técnicas de Transferencia Génica y Vectores.
        

            04. Tipos y aplicaciones de la Inmunoterapia Génica.
        

            05. Inmunoterapia con Células Dendríticas.
        

            06. Inmunoterapia con otras células inmunes.
        

            07. Terapia con Células Madre (Stem Cells).
        

            08. Producción y conjugación de nanopartículas.
        

            09. Estabilidad y toxicidad de las nanopartículas en medios biológicos.
        

            10. Aplicaciones Biotecnológicas y Biomédicas de las Nanopartículas.
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica

Bibliografía Ampliación

Requisitos previos

Ninguno

Recomendaciones

Haber cursado y superado la asignatura "Bioquímica" y la asignatura "Genética"
ambas del grado de Biotecnología

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Esta actividad formativa se divide en dos partes,
cada una de ellas de 30 horas de prácticas de
laboratorio, en la que el alumno aprenderá a
analizar, purificar y cuantificar ADN plasmídico
y genómico

El alumno completará su formación con el trabajo
individualizado no presencial dirigido a
comprender y completar los contenidos impartidos
en las sesiones de prácticas. Se  incluye el
trabajo autónomo, la búsqueda de bibliográfía y
la ampliación de conocimientos sobre temas
aconsejados por el profesor.

El alumno podrá resolver las dudas que tenga
referente a los temas tratados en las sesiones
prácticas de una forma individulizada o en
pequeños grupos.

Lecturas obligadas

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

La evaluación de esta asignatura se hará teniendo en cuenta tanto los
conocimientos adquiridos por el alumno como el trabajo personal desarrollado en
la misma. Se seguirá un modelo de evaluación continua, el cual comprenderá el
seguimiento del trabajo personal del alumno por medio de la participación y
trabajo en las sesiones prácticas, además del examen teórico de los conocimientos
adquiridos durante las prácticas.
Se valorará la adecuación y claridad de las respuestas a las cuestiones
planteadas en las pruebas escritas.
La evaluación del informe de prácticas tendrá una especial consideración.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

- La asistencia será obligatoria.
- Aquellos alumnos cuyas faltas de asistencia superen el 5% de las horas
presenciales perderán la puntuación correspondiente a estas actividades y su nota
corresponderá exclusivamente a la nota obtenida en los ejercicios de examen, que
se evaluará sobre el 100% de la nota.
- La superación de la asignatura requerirá que se obtenga como mínimo una
puntuación media de 5 puntos y, al menos, 4 puntos sobre diez en cada uno de
apartados que se calificarán, según se indica más abajo:

Examen final: 50 %
Cuaderno de laboratorio: 10 %
Informe de las prácticas 30 %
Actitud en el laboratorio 10 %

Descripcion de los Contenidos

            A) Primera parte

Clonación y Transformación de plásmidos recombinantes en bacterias (Escherichia coli)
· Manipulación de ácidos nucleicos: Purificación de ADN total y plasmídico; amplificación de secuencias
específicas a partir de ADN total o a directamente partir de aislamientos de bacterias; y utilización de
endonucleasas de restricción.
· Preparación de reacciones de ligación para la construcción de plásmidos recombinantes.
· Preparación de células competentes a partir de un cultivo de E. coli.
· Transformación de las células competentes con plásmidos recombinantes.

B) Segunda parte

El alumno realizará alguna de las siguientes prácticas de laboratorio:
· Producción de proteinas recombinantes en un sistema de expresión procariota.
· Aislamiento y purificación de proteínas recombinantes.
· Técnicas de purificación de proteínas.
· Selección de recombinantes mediante análisis de colonias por PCR.
· Secuenciación automática de ADN.
· Aislamiento y análisis de ADN genómico.
· Tipaje del sexo mediante el análisis de STR
· Amplificación de ADN mediante PCR
· PCR cuantitativa en Tiempo Real
· Diseño de cebadores
· Análisis bioinformático de secuencias de ADN y Proteínas
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica

Bibliografía Ampliación

Requisitos previos

Ninguno

Recomendaciones

Es recomendable haber cursado las asignaturas de Termodinámica y Cinética, Física
I y II, Matemáticas I, II, Estadística, Genética, Microbiología y Bioquímica, así
como haberse matriculado de las demás asignaturas de la Materia "Ingeniería de
Sistema Biotecnológicos" y de la asignatura "Procesos Biotecnológicos".

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Esta actividad formativa esta formada por
sesiones de laboratorio de 4 horas, durante 15
días por alumno y se divide en dos partes
(Microbiología y Bioerreactores), cada una de
ellas de 30 horas de prácticas de laboratorio, en
la que el alumno aprenderá desarrollar procesos
biotecnológicos integrados, tanto desde el punto
de vista de desarrollo y manejo técnico de los
equipos necesarios como desde el punto de vista
biológico mediante el manejo y utilización de
diferentes microorganismos y/o enzimas aplicados
a procesos de alto valor industrial.

El alumno estudiará los contenidos teóricos que
forman la base científico-tecnológica de las
prácticas de laboratorio, de forma que pueda
actuar de forma autónoma en el mismo.
Se llevará a cabo el tratamiento de los datos
obtenidos en el laboratorio así como una memoria
final de prácticas que deberá de incluir los
resultados relevantes obtenidos, su discusión y
sus conclusiones. Además, realizará la
preparación del examen final.

Atendiendo a un modelo de evaluación contínua, se
realizará un seguimiento del trabajo del alumno
en el laboratorio que incluirá la resolución de
cuestiones de forma individual ante el profesor.
Se evaluará el trabajo realizado en la memoria de
prácticas. Se desarrollará una prueba teorica
para demostrar los conocimientos y capacidades
adquiridas durante el desarrollo de la asignatura.

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

La asistencia a las prácticas es obligatoria para aprobar la asignatura.
Se valorará la adquisición de las distintas competencias descritas según un
modelo de evaluación continua, que incluye preguntas en el laboratorio (en las
que se valorará la coherencia y exactitud en los argumentos de las respuestas),
capacidad de integración en el grupo humano asignado, habilidad práctica y rigor
experimental para resolver las técnicas de laboratorio propuestas, precisión y
claridad en la exposición de los resultados en la memoria, así como de las
conclusiones más relevantes que se pueden obtener.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

La asignatura se aprobará con una calificación global igual o superior a 5.0,
siempre que se cumplan los requisitos mínimos.
Para dicha calificación se tendrán en cuenta las siguientes calificaciones
particulares:
- Nota de Laboratorio:40%
- Nota de la Memoria Final:20%
- Nota del Examen Final: 40%
Los requisitos mínimos son: haber asistido a todas las sesiones prácticas de
laboratorio y obtener más de un 4,0 sobre 10 en los apartados Nota de laboratorio
y Nota de Examen Final.
Para los alumnos que no superen la asignatura en junio, se guardarán las notas de
Laboratorio y Memoria en las convocatorias de septiembre y febrero (no en
posteriores), no siendo en ese caso necesario superar los requisitos mínimos
(salvo el relativo a la asistencia a las sesiones prácticas). En ambas
convocatorias se aprobará con una nota promedio igual o superior a 5,0.

Descripcion de los Contenidos

            Se realizarán diversas prácticas individuales, integradas en el desarrollo de un proceso biotecnológico completo.
Incluirán varias prácticas del área de microbiología, con preparación de medios de cultivo con materias primas,
medios de inóculo y de fermentación, pruebas de determinación y clasificación de microorganismos, distintas
técnicas de recuento de microorganismos y viabilidad, bioensayos, etc.y algunas otras relacionadas directamente con el
diseño y operación de biorreactores (elección del reactor adecuado,modelo de flujo, selección y evaluación de las
variables de operación, instrumentación y análisis necesarios, operación con reactores, escalamiento del
proceso...)así como técnicas de separación para concentración y/o purificación de productos.
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica

Bibliografía Ampliación

Recomendaciones

Haber cursado las asignaturas de Genética, Microbiología y Bioquímica.

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Exposición verbal de los contenidos teóricos
mediante clase magistral. Los contenidos y
materiales de apoyo estarán a disposición de los
alumnos en el Campus virtual.

Prácticas de laboratorio en grupo en el que el
profesor va guiando al alumno durante los pasos
que se tienen que llevar a cabo en los diferentes
protocolos. El objetivo es que el alumno,
orientado por el profesor, sea capaz de realizar
adecuadamente prácticas de laboratorio de
Genética a partir de protocolos descritos y
alcance los objetivos deseados.

El alumno llevará a cabo el estudio de las
contenidos teóricos y asimilación de las técnicas
utilizadas en las clases prácticas. Preparará de
forma individual la resolución de cuestiones,
trabajos y memorias.

El alumno contará con la ayuda del profesor para
cualquier duda, problema o apoyo en la búsqueda
de recursos e información.

Tiempo que el alumno dedicará a la preparación y
realización del examen.

Cualquier otra actividad a la que el alumno
dedique tiempo para completar su aprendizaje de
cara a la evaluación de la asignatura y su propia
formación en la misma.

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

- La adquisición de competencias se valorará a través de diversas actividades de
evaluación tal y como se recoge en el apartado 5.3 de la Memoria del Grado.

- Se valorará la capacidad de integración de la información recibida, la
coherencia en los argumentos, la claridad, la corrección y la concreción en las
respuestas a las cuestiones planteadas sobre el contenido teórico-práctico de la
asignatura.

- La asistencia a prácticas será obligatoria.

- En las pruebas de evaluación realizadas por el alumno (exámenes) se valorará la
adecuación, claridad, coherencia, justificación y precisión en las respuestas.

- Las notas obtenidas en las prácticas  se guardarán para las convocatorias de
Septiembre y Febrero.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

-  Pruebas escritas u orales de acreditación de contenidos de la asignatura.

- Actividades y memoria de prácticas. Las prácticas de laboratorio son de
asistencia obligatoria y existirá un control sistemático de asistencia a las
mismas. La asistencia a prácticas es una condición necesaria para poder
presentarse al examen y aprobar la asignatura.

Las actividades y prácticas se valorarán con el 20 % del total de la nota de la
asignatura.
El examen teórico valdrá el 80 % restante.
Para sumar ambas calificaciones se necesita tener aprobadas (al menos un cinco)
en cada una de ellas.

Descripcion de los Contenidos

            TEORIA

1. Células Madre

2. La Clonación

3. Organismos modificados genéticamente:
- Ingeniería genética en animales
- Transformación genética en animales

4. Cultivo in vitro vegetal. Propagación clonal

5. Organismos modificados genéticamente:
- Ingeniería genética en vegetales
- Transformación genética en vegetales

6. Obtención de productos de interés

7. Técnicas de mejora genética en animales:
- Mejora por selección
- Mejora por cruzamiento

8. Mejora por variación cromosómica. Poliploides y haploides

9. Conservación de germoplasma



PRACTICAS

Prácticas de informática
Prácticas de laboratorio. Cultivo in vitro de
plantas. Transformación vegetal.


        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica

Bibliografía Ampliación

Recomendaciones

Es aconsejable aprobar los contenidos de la materia Bioquímica.

Profesores

Competencias

Se relacionan aquí las competencias de la Materia/módulo o título a que pertenece la asignatura, entre las que el profesor podrá indicar las relacionadas con la asignatura.

Resultados Aprendizaje

Actividades formativas

Esta actividad consta de 30 sesiones de una hora
de duración en las que se impartirán clases
magistrales durante las cuales el profesor
explicará los fundamentos teóricos de la materia
y se realizará un seguimiento de la adquisición
de conocimientos por parte de los alumnos.

Consiste en 10 sesiones de una hora de duración
en las que el profesor realizará algunos
problemas que servirán de ejemplo y se
profundizará en conceptos básicos del temario,
tanto teórico como práctico. Se fomentará la
participación de los alumnos tanto de forma
individual como en grupo, bien a través de
resolución de problemas por parte de grupos
reducidos de alumnos o bien a través de la
preparación y exposición de temas relacionados
con el metabolismo.

Se realizarán 5 sesiones de 4 horas de duración
de prácticas de laboratorio supervisadas por el
profesor. Durante la última hora de cada sesión
se discutirán los resultados obtenidos para
facilitarle la elaboración de la memoria de
prácticas que deberá presentar tras la
finalización de esta actividad.

Estudio de la información adquirida en las clases
magistrales. Profundización en estos
conocimientos con la ayuda de la bibliografía y
de páginas web recomendadas por el profesor.
Búsqueda y análisis de información para
preparación de seminarios. Elaboración de la
memoria de prácticas.

En las tutorías se resolverán dudas y se
orientará de forma individualizada en lo relativo
a los conocimientos teóricos, resolución de
problemas y/o elaboración de la memoria de
prácticas. Estas tutorías se realizarán a
petición del alumno y podrán desarrollarse de
forma presencial o a través del aula virtual o
del correo electrónico.

El alumno realizará una prueba en la que
demostrará los conocimientos teóricos y prácticos
adquiridos.

Evaluación

Criterios Generales de Evaluación

Se valorará la adecuación y claridad de las respuestas a las cuestiones
planteadas en las pruebas escritas. Asimismo se valorará la exposición oral y
capacidad de síntesis en los seminarios y la coherencia en la interpretración de
los resultados obtenidos en las clases prácticas y su plasmación en la memoria de
prácticas.

Procedimiento de Evaluación

Procedimiento de calificación

La calificación final obtenida se obtendrá de acuerdo con la siguiente
proporción:
Prueba final escrita sobre contenidos teóricos: 70%
Pruebas parciales sobre contenidos teóricos 15%
Prácticas de laboratorio: 15%
La preparación y exposición de un tema se valorará con una nota adicional de
hasta 1 punto sobre la nota final de la asignatura.
Para aprobar la asignatura debe obtenerse una calificación de al menos 5 sobre 10
tanto en el examen final como en la evaluación de las prácticas de laboratorio.

Descripcion de los Contenidos

            Tema 01. Introducción al metabolismo. Bases del metabolismo energético.
        

            Tema 02. Metabolismo de los hidratos de carbono: la glucolisis.
        

            Tema 03. Procesos oxidativos: ciclo del ácido cítrico y ruta de las pentosas fosfato.
        

            Tema 04. Transporte electrónico, fosforilación oxidativa.
        

            Tema 05. Biosíntesis de Hidratos de Carbono: Fotosíntesis.
        

            Tema 06. Gluconeogénesis y metabolismo del glucógeno.
        

            Tema 07. Metabolismo de los lípidos: metabolismo de los ácidos grasos.
        

            Tema 08. Metabolismo de los lípidos: metabolismo del colesterol y sus derivados.
        

            Tema 09. Metabolismo de los compuestos nitrogenados: vías de adquisición del nitrógeno y formas de excreción.
        

            Tema 10. Metabolismo de aminoácidos.
        

            Tema 11. Metabolismo de nucleótidos.
        

            X PRÁCTICAS DE LABORATORIO.
        

Bibliografía

Bibliografía Básica

Bibliografía Específica